
شناسایی گونه های اصلی بروسلا ایجاد کننده سقط جنین در گوسفند و بز به روش مولکولی و کلاسیک | ||
Archives of Razi Institute | ||
Article 8, Volume 76, Issue 1, January 0, Pages 51-60 PDF (432.45 K) | ||
Document Type: مقالات پژوهشی | ||
DOI: 10.22092/ari.2019.128003.1398 | ||
Abstract | ||
بروسلوز، به عنوان یکی از نگرانی های بهداشت عمومی شناخته شده است که منجر به زیان های اقتصادی در حیوانات و مشکلات فراوان در بهداشت عمومی می شود. در این مطالعه، گونه های بروسلا جدا شده از جنین های سقط شده گوسفند و بز از سال 2016 تا سال 2019 با روش های مولکولی و کلاسیک در نقاط مختلف ایران مورد مطالعه قرار گرفت تا گونه های بروسلا که بیشترین خطر عوارض سقط جنین را دارند، مشخص گردند. در مجموع 189 نمونه از 35 سری نمونه های سقط جنین از شیر (16 گوسفند و 8 بز) ، 19 محتویات شکمی (گوسفند) و 146 مورد سقط جنین (116 گوسفند و 30 بز) موارد آزمایشات باکتری شناسی قرار گرفتند و جدایه های بروسلا به دست آمده با روش های فنوتیپی و مولکولی بررسی شدند. واکنش چند زنجیره ای (Bruce-ladder PCR) و واکنش زنجیره ای پلیمراز مبتنی بر IS711 بر روی تمام DNA های استخراج شده برای ارزیابی حضور بروسلا انجام شد. بر اساس نتایج این مطالعه، تمام جدایه های جداسازی شده از نمونه های سقط جنین گوسفند و بز بروسلا ملیتنسیس و بروسلا ابورتوس بودند. واکسن بروسلا ملیتنسیس سویه Rev1 نیز بخش کوچکی از عوامل ایجاد سقط گوسفند و بز را شامل می شد. علارغم شیوع بروسلا ابورتوس در گوسفند، موارد سقط جنین به طور عمده با عفونت های ناشی از بروسلا ملیتنسیس در گوسفند و بز ها همراه بود، اگرچه بروسلا ملیتنسیس بیوار 1 عامل اکثر موارد سقط جنین مورد مطالعه بود. اطلاعات حاصل از این تحقیق و تکنیک های انجام شده ، کمک می کنند تا یک تصویر جامع از گونه های مختلف بروسلا که باعث سقط جنین در گوسفند و بز در ایران می شوند، داشته باشیم. این کار با شناسایی عوامل بروسلا ایجاد کننده سقط جنین در سطح بایوار اطلاعات ارزشمندی را برای برنامه های کنترل آینده و برنامه های واکسیناسیون در مناطق خاورمیانه فراهم می کند. | ||
Keywords | ||
سقط جنین گوسفند و بز; بروسلا ملیتنسیس; بروسلا ابورتوس; سویه واکسینال Rev1 | ||
Supplementary Files
|
||
References | ||
Alamian, S., Dadar, M., 2019. Brucella abortus contamination of camel milk in two Iranian regions. Prev Vet Med 169, 104708.
Alton, G., Jones, L., Angus, R., Verger, J., 1988. Techniques for the Brucellosis laboratory. Paris: Institute National de la Recherdie Agrononique.
Ashrafganjooyi, S., Saedadeli, N., Alamian, S., Khalili, M., Shirazi, Z., 2017. Isolation and biotyping of Brucella spp. from sheep and goats raw milk in southeastern Iran. Trop Biomed 34, 507-511.
Banai, M., 2002. Control of small ruminant brucellosis by use of Brucella melitensis Rev. 1 vaccine: laboratory aspects and field observations. Vet Microbiol 90, 497-519.
Banai, M., Mayer, I., Cohen, A., 1990. Isolation, identification, and characterization in Israel of Brucella melitensis biovar 1 atypical strains susceptible to dyes and penicillin, indicating the evolution of a new variant. J Clin Microbiol 28, 1057-1059.
Behroozikhah, A.M., Bagheri Nejad, R., Amiri, K., Bahonar, A.R., 2012. Identification at biovar level of Brucella isolates causing abortion in small ruminants of Iran. Journal of pathogens 2012, 357235.
Blasco, J.M., Molina-Flores, B., 2011. Control and eradication of Brucella melitensis infection in sheep and goats. Vet Clin: Food Anim Practice 27, 95-104.
Bricker, B.J., Halling, S.M., 1994. Differentiation of Brucella abortus bv. 1, 2, and 4, Brucella melitensis, Brucella ovis, and Brucella suis bv. 1 by PCR. J Clin Microbiol 32, 2660-2666.
Bricker, B.J., Halling, S.M., 1995. Enhancement of the Brucella AMOS PCR assay for differentiation of Brucella abortus vaccine strains S19 and RB51. J Clin Microbiol 33, 1640-1642.
Castelo, C., Simões, J., 2019. Risk factors of brucellosis (re-) incidence in sheep and goat flocks in an endemic area of Portugal. Trop Anim Health Prod 51, 487-490.
Dadar, M., Alamian, S., Behrozikhah, A.M., Yazdani, F., Kalantari, A., Etemadi, A., 2019a. Molecular identification of Brucella species and biovars associated with animal and human infection in Iran. Veterinary Research Forum. Faculty of Veterinary Medicine, Urmia University.
Dadar, M., Shahali, Y., Wareth, G., 2019b. Molecular Diagnosis of Acute and Chronic Brucellosis in Humans. Microbial Technology for the Welfare of Society, Springer, pp. 223-245.
Dadar, M., Shahali, Y., Whatmore, A.M., 2018. Human brucellosis caused by raw dairy products: A review on the occurrence, major risk factors and prevention. Int J Food Microbiol.
Ewalt, D.R., Bricker, B.J., 2000. Validation of the Abbreviated BrucellaAMOS PCR as a Rapid Screening Method for Differentiation ofBrucella abortus Field Strain Isolates and the Vaccine Strains, 19 and RB51. J Clin Microbiol 38, 3085-3086.
Gameel, S., Mohamed, S., Mustafa, A., Azwai, S., 1993. Prevalence of camel brucellosis in Libya. Trop Anim Health Prod 25, 91-93.
Gharekhani, J., Rasouli, M., Abbasi-Doulatshahi, E., Bahrami, M., Hemati, Z., Rezaei, A., et al., 2016. Sero-epidemiological survey of brucellosis in small ruminants in Hamedan province, Iran. J Adv Vet Anim Res 3, 399-405.
Jiang, H., Fan, M., Chen, J., Mi, J., Yu, R., Zhao, H., et al., 2011. MLVA genotyping of Chinese human Brucella melitensis biovar 1, 2 and 3 isolates. BMC Microbiol 11, 256.
López-Goñi, I., García-Yoldi, D., Marin, C., De Miguel, M., Munoz, P., Blasco, J., et al., 2008. Evaluation of a multiplex PCR assay (Bruce-ladder) for molecular typing of all Brucella species, including the vaccine strains. J Clin Microbiol 46, 3484-3487.
Muendo, E.N., Mbatha, P.M., Macharia, J., Abdoel, T.H., Janszen, P.V., Pastoor, R., et al., 2012. Infection of cattle in Kenya with Brucella abortus biovar 3 and Brucella melitensis biovar 1 genotypes. Trop Anim Health Prod 44, 17-20.
Ocholi, R., Kwaga, J., Ajogi, I., Bale, J., 2005. Abortion due to Brucella abortus in sheep in Nigeria. Revue scientifique et technique-Office. international des épizooties 24, 973.
Refai, M., 2002. Incidence and control of brucellosis in the Near East region. Vet Microbiol 90, 81-110.
Santos, R.d., de Souza, A., Gomes, S., Socoloski, S., de Castro, B., 2016. Research on Brucella abortus antibodies in sheep from mid-north Mato Grosso State, Brazil. Veterinária e Zootecnia 23, 642-646.
Wareth, G., Melzer, F., Tomaso, H., Roesler, U., Neubauer, H., 2015. Detection of Brucella abortus DNA in aborted goats and sheep in Egypt by real-time PCR. BMC Research Notes 8, 212.
Zhang, N., Huang, D., Wu, W., Liu, J., Liang, F., Zhou, B., et al., 2018. Animal brucellosis control or eradication programs worldwide: A systematic review of experiences and lessons learned. Prev Vet Med 160, 105-115.
Zowghi, E., Ebadi, A., Yarahmadi, M., 2008. Isolation and identification of Brucella organisms in Iran. Arch Clin Infect Dis 3, 185-188. | ||
Statistics Article View: 1,970 PDF Download: 913 |