(2021). پروفاژ تایپینگ استافیلوکوکوس اورئوس های جدا شده از طیور گوشتی. , 76(3), 499-506. doi: 10.22092/ari.2020.343199.1498
. "پروفاژ تایپینگ استافیلوکوکوس اورئوس های جدا شده از طیور گوشتی". , 76, 3, 2021, 499-506. doi: 10.22092/ari.2020.343199.1498
(2021). 'پروفاژ تایپینگ استافیلوکوکوس اورئوس های جدا شده از طیور گوشتی', , 76(3), pp. 499-506. doi: 10.22092/ari.2020.343199.1498
پروفاژ تایپینگ استافیلوکوکوس اورئوس های جدا شده از طیور گوشتی. , 2021; 76(3): 499-506. doi: 10.22092/ari.2020.343199.1498

پروفاژ تایپینگ استافیلوکوکوس اورئوس های جدا شده از طیور گوشتی

Archives of Razi Institute
Article 13, Volume 76, Issue 3, January 0, Pages 499-506    PDF (390.17 K)
Document Type: مقالات پژوهشی
DOI: 10.22092/ari.2020.343199.1498
Abstract
زمینه و هدف: استافیلوکوکوس اورئوس یکی از عوامل شناخته شده فرصت طلب و بیماری زا در بسیاری از حیوانات وحشی و اهلی است. انواع مختلفی از عفونت‌ها از عفونتهای چرکی پوستی گرفته تا عفونتهایی که تهدید کننده زندگی هستند، می توانند توسط این باکتری ایجاد شوند. هدف: این مطالعه با هدف تعیین نوع پروفاژ و الگوی مقاومت آنتی بیوتیکی استافیلوکوکوس اورئوس جدا شده از مرغ گوشتی قبل از ذبح انجام شد. مواد و روش ها: در این مطالعه 200 نمونه از 20 گله مختلف قبل از کشتار جمع آوری شد. در هر گله ، 10 پرنده به طور تصادفی برای جداسازی باکتریها نمونه برداری شدند. شناسایی استافیلوکوکوس‌ها قبل از انجام آزمایش برای تشخیص ژن mecA در تمام نمونه های مقاوم به اکساسیلین و سفوتاکسیم با استفاده از روش های بیوشیمیایی و مولکولی انجام شد. یافته ها: بیشترین مقاومت آنتی بیوتیکی مربوط به سیپروفلوکساسین (94٪) و بیشترین میزان حساسیت در برابر جنتامایسین (85٪) بود. بیست و هشت (27%) نمونه نسبت به اکساسیلین مقاوم بودند. در جدایه های MRSA ، پنج تیپ پروفاژ مشاهده شد ، که در بین آن‌ها SGB با فراوانی 75٪ به عنوان پروفاژ غالب در نظر گرفته شد. در جدایه‌های حساس به متی سیلین استافیلوکوکوس اورئوس ، 8 نوع پروفاژ مشاهده شد که در آن پروفاژ SGFa با فراوانی حدود 82٪ ، پروفاژ غالب بود. نتیجه گیری: شیوع بالای جدا شده های MRSA می تواند خطر انتقال این باکتری ها به چرخه مواد غذایی را نشان دهد. علاوه بر این ، وجود پروفاژ‌های مختلف در این جدایه‌ها می تواند خطری برای سلامت عمومی از طریق تولید عوامل بیماری زا در این باکتری و حتی سایر باکتری ها باشد.
Keywords
استافیلوکوکوس اورئوس; مقاوم به متی سیلین; پروفاژتایپینگ; طیور گوشتی
References
  1. Madahi H, Rostami F, Rahimi E, Safarpoor Dehkordi F. Prevalence of Enterotoxigenic Staphylococcus aureus Isolated From Chicken Nugget in Iran. Jundishapur J Microbiol. 2014;7(8):e10237.
  2. Turlej A, Hryniewicz W, Empel J. Staphylococcal cassette chromosome mec (Sccmec) classification and typing methods, an overview. Pol J Microbiol 2011;60:95-103.
  3. Workman M, Nigro OD, Steward GF. Identification of prophage in Hawaiian coastal water isolate of Staphylococcus aureus. J Young Investig. 2006;15:1-8.
  4. Bennett PM. Plasmid encoded antibiotic resistance: acquisition and transfer of antibiotic resistance genes in bacteria. Br J Pharmacol. 2008;153(S1):S347-S57.
  5. Deurenberg RH, Vink C, Kalenic S, Friedrich AW, Bruggeman CA, Stobberingh EE. The molecular evolution of methicillin-resistant Staphylococcus aureus. Clin Microbiol Infect. 2007;13(3):222-35.
  6. Pantůček R, Doškař J, Růžičková V, Kašpárek P, Oráčová E, Kvardová V, et al. Identification of bacteriophage types and their carriage in Staphylococcus aureus. Arch Virol. 2004;149(9):1689-703.
  7. Udo R, Hans-Jörg L, Michaela M, Birgit L, Norbert L. Rapid identification of methicillin-resistant Staphylococcus aureus and simultaneous species confirmation using real-time fluorescence PCR. J Clin Microbiol. 2000;38(6):2429-33.
  8. Quinn PJ, Markey BK, Leonard FC, Hartigan P, Fanning S, Fitzpartick ES. Veterinary Microbiology and Microbial Disease. 2nd Ed ed: John Wiley & Sons; 2011.
  9. Otter JA, French GL. Molecular epidemiology of community-associated meticillin-resistant Staphylococcus aureus in Europe. Lancet Infect Dis. 2010;10(4):227-39.
  10. Leonard FC, Markey BK. Meticillin-resistant Staphylococcus aureus in animals: A review. Vet J. 2008;175(1):27-36.
  11. Corrente M, Monno R, Totaro M, Martella V. Characterization of methicillin resistant Staphylococcus aureus (MRSA) isolated at the Policlinico Hospital of Bari (Italy). New Microbiol 2005;28:57-65.
  12. Kateete DP, Kimani CN, Katabazi FA, Okeng A, Okee MS, Nanteza A, et al. Identification of Staphylococcus aureus: DNase and Mannitol salt agar improve the efficiency of the tube coagulase test. Ann Clin Microbiol Antimicrob. 2010;9(1):23.
  13. Peng X, Yu K-Q, Deng G-H, Jiang Y-X, Wang Y, Zhang G-X, et al. Comparison of direct boiling method with commercial kits for extracting fecal microbiome DNA by Illumina sequencing of 16S rRNA tags. J Microbiol Methods. 2013;95(3):455-62.
  1. Wayne PA. CLSI, Performance Standards for Antimicrobial Susceptibility Testing. 28th Ed ed. Clinical and Laboratory Standards Institute: CLSI supplement M100; 2018.
  2. Murray PR, Rosenthal KS, Pfaller MA. Medical microbiology. 8th Ed ed: Elsevier Health Sciences; 2015.
  3. Kotilainen P, Routamaa M, Peltonen R, Oksi J, Rintala E, Meurman O, et al. Elimination of Epidemic Methicillin-Resistant Staphylococcus aureus from a University Hospital and District Institutions, Finland. Emerg Infect Dis. 2003;9(2):169.
  4. Andrea T. F, Kristina K, Melanie H, Tomasz H, Christopher E, Ralf E, et al. Characterization of Methicillin-Resistant Staphylococcus aureus Isolates from Food and Food Products of Poultry Origin in Germany. Appl Environ Microbiol. 2011;77(20):7151-7.
  5. Persoons D, Van Hoorebeke S, Hermans K, Butaye P, de Kruif A, Haesebrouck F, et al. Methicillin-resistant Staphylococcus aureus in poultry. Emerg Infect Dis. 2009;15(3):452.
  6. Rahimi F, Bouzari M, Katouli M, Pourshafie MR. Prophage and antibiotic resistance profiles of methicillin-resistant Staphylococcus aureus strains in Iran. Arch Virol. 2012;157(9):1807-11.
  7. Otalu O, Junaidu K, Chukwudi OE, Jarlath UV. Multi-drug resistant coagulase positive Staphylococcus aureus from live and slaughtered chickens in Zaria, Nigeria. Int J Poult Sci. 2011;10:871-5.
Statistics
Article View: 1,934
PDF Download: 2,905


counter
Journal management system. designed by sinaweb