(2021). افزودن ال-کارنیتین به محیط سردسازی سبب حفظ اسپرم بز در دوره ذخیره سرمایی می شود. , 76(6), 1797-1802. doi: 10.22092/ari.2021.356398.1836
. "افزودن ال-کارنیتین به محیط سردسازی سبب حفظ اسپرم بز در دوره ذخیره سرمایی می شود". , 76, 6, 2021, 1797-1802. doi: 10.22092/ari.2021.356398.1836
(2021). 'افزودن ال-کارنیتین به محیط سردسازی سبب حفظ اسپرم بز در دوره ذخیره سرمایی می شود', , 76(6), pp. 1797-1802. doi: 10.22092/ari.2021.356398.1836
افزودن ال-کارنیتین به محیط سردسازی سبب حفظ اسپرم بز در دوره ذخیره سرمایی می شود. , 2021; 76(6): 1797-1802. doi: 10.22092/ari.2021.356398.1836

افزودن ال-کارنیتین به محیط سردسازی سبب حفظ اسپرم بز در دوره ذخیره سرمایی می شود

Archives of Razi Institute
Article 25, Volume 76, Issue 6, January and February 0, Pages 1797-1802    PDF (373.82 K)
Document Type: مقالات پژوهشی
DOI: 10.22092/ari.2021.356398.1836
Abstract
در این مطالعه اثر افزودن ال-کارنیتین به محیط سردسازی بر کیفیت اسپرم بز طی فرایند ذخیره سرمایی در دمای 4 درجه سانتیگراد ارزیابی شده است. نمونه های اسپرم پس جمع آوری و رقیق سازی به چهار قسمت تقسیم شده و مقادیر 0، 1، 5 و 10 میلی مولار ال-کارنیتین را دریافت نمودند. سپس نمونه ها در دمای 4 درجه سانتیگراد سرد شده و طی 48 ساعت ذخیره شدند. جنبایی کل و پیشرونده، زنده مانی، پراکسیداسیون لیپیدها، سلامت غشا و فعالیت میتوکندری در زمان های 0، 24 و 48 ساعت ذخیره سرمایی مورد ارزیابی قرار گرفتند. در زمان 0، تیمارها تاثیری بر کیفیت نمونه های اسپرم نداشتند (P>0.05). در زمان های 24 و 48 ساعت از ذخیره سرمایی، تیمار 5 میلی مولار ال-کارنیتین مقادیر بالاتر (P≤0.05) جنبایی کل و پیشرونده، زنده مانی، سلامت غشا و فعالیت میتوکندری را نسبت به سایر گروه ها نشان داد. همچنین تیمار 5 میلی مولار ال-کارنیتین موجب پراکسیداسیون لیپیدی کمتر (P≤0.05) در زمان های 24 و 48 ساعت از ذخیره سرمایی نسبت به سایر گروه ها شد. در نتیجه، استفاده از 5 میلی مولار ال-کارنیتین در محیط دخیره سرمایی اسپرم بز می تواند راهی مناسب برای محافظت از اسپرم بز در هنگام 24 و 48 ساعت سردسازی در مقابل آسیب های ساختاری و عملکردی طی ذخیره سرمایی باشد.
Keywords
بز; ذخیره سرمایی; ال-کارنیتین; ارزیابی کیفیت; اسپرم
Supplementary Files
References
  1. Bucak MN, Tekin N. Protective effect of taurine, glutathione and trehalose on the liquid storage of ram semen. Small Rumin Res. 2007;73(1):103-8.
  2. Salmani H, Towhidi A, Zhandi M, Bahreini M, Sharafi M. In vitro assessment of soybean lecithin and egg yolk based diluents for cryopreservation of goat semen. Cryobiology. 2014;68(2):276-80.
  3. Hinton BT, Snoswell AM, Setchell BP. The concentration of carnitine in the luminal fluid of the testis and epididymis of the rat and some other mammals. J Reprod Fert. 1979;56:105-11.
  4. Fattah A, Sharafi M, Masoudi R, Shahverdi A, Esmaeili V. L-carnitine is a survival factor for chilled storage of rooster semen for a long time. Cryobiology. 2017;74:13-8.
  5. Fattah A, Sharafi M, Masoudi R, Shahverdi A, Esmaeili V, Najafi A. L-Carnitine in rooster semen cryopreservation: Flow cytometric, biochemical and motion findings for frozen-thawed sperm. Cryobiology. 2017;74:148-53.
  6. Neuman SL, Lin TL, Heste PY. The effect of dietary carnitine on semen traits of white Leghorn roosters. Poult Sci. 2002;81(4):495-503.
  7. Yeste M, Sancho S, Briz M, Pinart E, Bussalleu E, Bonet S. A diet supplemented with L-carnitine improves the sperm quality of Pietrain but not of Duroc and Large White boars when photoperiod and temperature increase. Theriogenology. 2010;73(5):577-86.
  8. Makhafola M, Umesiobi D, Mphaphathi ML, Masenya MB, Nedambale T. Characterisation of sperm cell motility rate of Southern African indigenous cockerel semen following analysis by sperm class analyser. J Anim Sci Adv. 2012;2:416-24.
  9. Revell SG, Mrode RA. An osmotic resistance test for bovine semen. Anim Reprod Sci. 1994;36(1):77-86.
  10. Masoudi R, Sharafi M, Pourazadi L, Dadashpour Davachi N, Asadzadeh N, Esmaeilkhanian S, et al. Supplementation of chilling storage medium with glutathione protects rooster sperm quality. Cryobiology. 2020;92:260-2.
  11. Esterbauer H, Cheeseman KH. [42] Determination of aldehydic lipid peroxidation products: Malonaldehyde and 4-hydroxynonenal. Methods in Enzymology. 186: Academic Press; 1990. p. 407-21.
  12. Gibb Z, Lambourne SR, Quadrelli J, Smith ND, Aitken RJ. L-carnitine and pyruvate are prosurvival factors during the storage of stallion spermatozoa at room temperature. Biol Reprod. 2015;93(4):104.
  13. Sharafi M, Zhandi M, Akbari Sharif A. Supplementation of soybean lecithin-based semen extender by antioxidants: complementary flowcytometric study on post-thawed ram spermatozoa. Cell Tissue Bank. 2015;16(2):261-9.
  14. Banihani S, Sharma R, Bayachou M, Sabanegh E, Agarwal A. Human sperm DNA oxidation, motility and viability in the presence of L-carnitine during in vitro incubation and centrifugation. Andrologia. 2012;44(1):505-12.
  15. Steiber A, Kerner J, Hoppel CL. Carnitine: a nutritional, biosynthetic, and functional perspective. Mol Aspects Med. 2004;25(5-6):455-73.
  16. Jeulin C, Lewin LM. Role of free L-carnitine and acetyl-L-carnitine in post-gonadal maturation of mammalian spermatozoa. Hum Reprod Update. 1996;2(2):87-102.
  17. Gulcin I. Antioxidant and antiradical activities of L-carnitine. Life Sci. 2006;78(8):803-11.
  18. Derin N, Izgut-Uysal VN, Agac A, Aliciguzel Y, Demir N. L-carnitine protects gastric mucosa by decreasing ischemia-reperfusion induced lipid peroxidation. J Physiol Pharmacol. 2004;55(3):595-606.
  19. Di Giacomo C, Latteri F, Fichera C, Sorrenti V, Campisi A, Castorina C, et al. Effect of acetyl-L-carnitine on lipid peroxidation and xanthine oxidase activity in rat skeletal muscle. Neurochem Res. 1993;18(11):1157-62.
  20. Shahverdi A, Sharafi M, Gourabi H, Yekta AA, Esmaeili V, Sharbatoghli M, et al. Fertility and flow cytometric evaluations of frozen-thawed rooster semen in cryopreservation medium containing low-density lipoprotein. Theriogenology. 2015;83(1):78-85.
  1. Silver IA, Erecińska M. Energetic demands of the Na+/K+ ATPase in mammalian astrocytes. Glia. 1997;21(1):35-45.
Statistics
Article View: 14,714
PDF Download: 56,091


counter
Journal management system. designed by sinaweb