اخبار و اعلانات

 آمار

تعداد نشریات286
تعداد نشریات سازمان84
تعداد شماره‌ها3,020
تعداد مقالات33,742
تعداد مشاهده مقاله44,988,453
تعداد دریافت فایل اصل مقاله47,401,205
جمشیدی, نگین, اصغری, احمد, نشاط, مهرداد, مرتضوی, پژمان. (1396). تاثیر تجویز سولفات منیزیم بر عملکرد کلیه متعاقب القا ایسکمی- بازخونرسانی در موش صحرایی. سامانه مدیریت نشریات علمی, 30(2), 63-75. doi: 10.22034/vj.2017.109224
نگین جمشیدی; احمد اصغری; مهرداد نشاط; پژمان مرتضوی. "تاثیر تجویز سولفات منیزیم بر عملکرد کلیه متعاقب القا ایسکمی- بازخونرسانی در موش صحرایی". سامانه مدیریت نشریات علمی, 30, 2, 1396, 63-75. doi: 10.22034/vj.2017.109224
جمشیدی, نگین, اصغری, احمد, نشاط, مهرداد, مرتضوی, پژمان. (1396). 'تاثیر تجویز سولفات منیزیم بر عملکرد کلیه متعاقب القا ایسکمی- بازخونرسانی در موش صحرایی', سامانه مدیریت نشریات علمی, 30(2), pp. 63-75. doi: 10.22034/vj.2017.109224
جمشیدی, نگین, اصغری, احمد, نشاط, مهرداد, مرتضوی, پژمان. تاثیر تجویز سولفات منیزیم بر عملکرد کلیه متعاقب القا ایسکمی- بازخونرسانی در موش صحرایی. سامانه مدیریت نشریات علمی, 1396; 30(2): 63-75. doi: 10.22034/vj.2017.109224

تاثیر تجویز سولفات منیزیم بر عملکرد کلیه متعاقب القا ایسکمی- بازخونرسانی در موش صحرایی

تحقیقات دامپزشکی و فرآورده‌های بیولوژیک
مقاله 8، دوره 30، شماره 2، تیر 1396، صفحه 63-75    اصل مقاله (1.18 M)
نوع مقاله: مقاله کامل
شناسه دیجیتال (DOI): 10.22034/vj.2017.109224
نویسندگان
نگین جمشیدی1؛ احمد اصغری* 2؛ مهرداد نشاط3؛ پژمان مرتضوی4
1دانش آموخته دکترای حرفه‌ای دامپزشکی، واحد علوم و تحقیقات، دانشگاه آزاد اسلامی، تهران، ایران
2گروه جراحی دامپزشکی، واحد علوم و تحقیقات، دانشگاه آزاد اسلامی، تهران، ایران
3گروه علوم درمانگاهی دامپزشکی، واحد تبریز، دانشگاه آزاد اسلامی، تبریز، ایران
4گروه پاتولوژی دامپزشکی، واحد علوم و تحقیقات، دانشگاه آزاد اسلامی، تهران، ایران
چکیده
این مطالعه به منظور بررسی اثر‌ پیشگیری کننده تجویز سولفات منیزیم بر عملکرد کلیه متعاقب ایسکمی- بازخونرسانی تجربی در موش صحرایی انجام گرفت. در این مطالعه از 25 سر موش صحرایی نر بالغ نژاد ویستار استفاده شد که بصورت تصادفی به 5 گروه 5 تایی تقسیم شدند. گروه اول (شاهد جراحی): در این گروه آب مقطر گاواژ شده و پس از گذشتن یک هفته، محوطه بطنی حیوانات باز شده و نفرکتومی کلیه چپ انجام گرفت. گروه دوم (ایسکمی-رپرفیوژن IR): این گروه تا زمان ایجاد ایسکمی بازخونرسانی هیچ دارویی دریافت نکرده و بعد از یک هفته محوطه بطنی آنها باز و عروق کلیه‌ها توسط پنس غیر‌ضربه‌ای بسته و بعد از 45 دقیقه آزاد شد و 8 ساعت بعد از آن نفرکتومی کلیه چپ صورت گرفت. گروه سوم: یک هفته قبل از القا ایسکمی، سولفات منیزیم(۲۵mg/kg) گاواژ شد و بعد از یک هفته محوطه بطنی آنها باز شد، عروق کلیه‌ها توسط پنس غیر‌ضربه‌ای بسته و بعد از 45 دقیقه آزاد گردید و 8 ساعت پس از آن، نفرکتومی کلیه چپ صورت گرفت. مراحل کار در گروه‌های چهارم و پنجم مشابه گروه سوم انجام گرفت با این تفاوت که موش‌ها به ترتیب سولفات منیزیم (۵۰mg/kg) و (۱۰۰mg/kg)را دریافت کردند. در انتهای آزمایش نمونه‌های بافتی برای ارزیابی آسیب‌شناسی و اندازه-گیری فعالیت مالون‌دی‌آلدئید، سوپراکسید دیسموتاز، کاتالاز و گلوتاتیون پراکسیداز اخذ شد. نتایج حاصل از آسیب‌شناسی کلیه نشان داد که میزان نکروز و دژنراسیون لوله‌های ادراری و ارتشاح سلول‌های التهابی در گروه‌های پیش‌درمان شده با سولفات منیزیم در مقایسه با گروه‌های درمان نشده، پایین‌تر بود. همچنین تیمار با سولفات منیزیم (۱۰۰mg/kg) بطور معنی‌داری مقادیر افزایش‌یافته مالون‌دی‌آلدئید بافت کلیه را کاهش داد و مقادیر سوپراکسید دیسموتاز، کاتالاز و گلوتاتیون پراکسیداز کاهش یافته کلیه را افزایش داده بود (05/0>p). نتایج تحقیق نشان داد که سولفات منیزیم توانسته است از آسیب‌های وارده به کلیه متعاقب القا ایسکمی- بازخونرسانی جلوگیری کند..
کلیدواژه‌ها
کلیه؛ ایسکمی- بازخونرسانی؛ سولفات منیزیم؛ موش صحرایی
عنوان مقاله [English]
Effects of magnesium sulfate administration on ischemia-reperfusion kidney in rat
نویسندگان [English]
N. Jamshidi1؛ A. Asghari2؛ M. Neshat3؛ P. Mortazavi4
1Veterinary Graduate Student, Science and Research Branch, Islamic Azad University, Tehran, Iran
2Department of Veterinary Surgery, Science and Research Branch, Islamic Azad University, Tehran, Iran
3Department of Veterinary Clinical Science, Tabriz Branch, Islamic Azad University, Tabriz, Iran
4Department of Pathology, Science and Research Branch, Islamic Azad University, Tehran, Iran.
چکیده [English]
This study designed to determine protective effect of magnesium sulfate on kidney function followed by ischemia-reperfusion in rat. A total 25 Wistar male rat randomly divided into 5 experimental groups (n=5). Control group: had no received medicine and gavage water for 1 week, then peritoneum opened and left kidney nephrectomy was created. The IR group: not received medicine until ischemia-reperfusion, the peritoneum opened and the renal ischemia done using clamp for 45 min, then 8 h later left nephrectomy was done. Group 3: received magnesium sulfate (25 mg/kg) for 1 week, then peritoneum opened and the renal ischemia done using clamp for 45 min, then 8 h later left nephrectomy was done. Groups 4 and 5 were similar to group 3, except rats received 50 and 100 mg/kg of magnesium sulfate, respectively. At the end of the study, tissue samples collected for histopathological evaluation and malondealdeide, Superoxide dismutase and Glutathione peroxidase levels. According to the results, the necrosis and degeneration of the nephrons was lower in magnesium sulfate treated groups compared to control grouse. Also, administration of magnesium sulfate (100 mg/kg) significantly normalized the elevated levels of malondealdeide and increased Superoxide dismutase and Glutathione peroxidase levels (P<0.05). These results suggest magnesium sulfate diminished ischemia-reperfusion injury in kidney in rat.
کلیدواژه‌ها [English]
Kidney, Ischemia-reperfusion, Magnesium sulfate, rat
مراجع

1.Afanas' ev, I. B., Suslova, T. B., Cheremisina, Z. P., Abramova, N. E. and L. G. Korkina. 1995. Study of antioxidant properties of metal aspartates. Analyst. 120 (3): 859-862.
2.Agarwal, A., Sharma, R. K., Desai, N. R., Prabakaran, S., Tavares, A. and E. Sabanegh. 2009. Role of oxidative stress in pathogenesis of varicocele and infertility. Urology. 73(3): 461-469.
3.Beyer, W. F. and I. Fridovich. 1987. Assaying for superoxide dismutase activity: some large consequences of minor changes in conditions. Analytical biochemistry. 161(2): 559-566.
4.Defraigne, J. O., Pincemail, J., Detry, O., Franssen, C., Meurisse, M. and R. Limet. 1995. Variations of glutathione and vitamin E concentrations after hypothermic storage in Euro-Collins solution and reperfusion of the rabbit kidney. Transplantation Proceedings. 27(5): 2783-2785.
5.Eckert, P. and K. Schnackerz. 1991. Ischemic tolerance of human skeletal muscle. Annals of Plastic Surgery. 26(1): 77-84.
6.Elin, R. (1987): Assessment of magnesium status. Clinical Chemistry. 33(11):1965-1970.
7.Fellstrom, B., Akuyrek, L. M. and L. Zezina. 1998. Post ischemic reperfusion injury and allograft arteriosclerosis. Transplant Proc. 384278-4280.
8.Freedman, A. M., Atrakchi, A. H., Cassidy, M. M. and W. B.Weglicki. 1990. Magnesium deficiency-induced cardiomyopathy: protection by vitamin E. Biochemical and Biophysical Research Communications. 170(3): 1102-1106.
9.Freedman, A. M., Mak, I. T., Stafford, R. E., Dickens, B. F., Cassidy, M. M., Muesing, R. A. and W. B.Weglicki. 1992. Erythrocytes from magnesium-deficient hamsters display an enhanced susceptibility to oxidative stress. American Journal of Physiology-Cell Physiology. 262(6): C1371-C1375.
10.Hans, C. P., Chaudhary, D. P. and D. D. Bansal. 2003. Effect of magnesium supplementation on oxidative stress in alloxanic diabetic rats. Magnesium research. 16(1): 13-19.
11.Holcberg, G., Amash, A., Sapir, O., Hallak, M., Sheiner, E., Ducler, D., Katz, M. and M. Huleihel. 2006. Different effects of magnesium sulfate and angiotensin II on the capacity of the fetal and maternal compartments of normal human placenta to secrete TNF-α and IL-6. Journal of reproductive immunology. 69(2): 115-125.
12.Jaeschke, H. and A. Farhood. 2002. Kupffer cell activation after no-flow ischemia versus hemorrhagic shock. Free Radical Biology and Medicine. 33(2): 210-219.
13.Kurokawa, K., Fine, L. G. and S.Klahr. 1982. Renal metabolism in obstructive nephropathy. Semin Nephrol. 231-39.
14.Liaño, F., Junco, E., Pascual, J., Madero, R. and E. Verde. 1998. The spectrum of acute renal failure in the intensive care unit compared with that seen in other settings. The Madrid Acute Renal Failure Study Group. Kidney international. Supplement. 66S16-24.
15.Liu, D. L., Jeppsson, B., Hakansson, C. H. and R. Odselius. 1996. Multiple-system organ damage resulting from prolonged hepatic inflow interruption: Electron microscopic findings. Archives of Surgery. 131(4): 442.
16.Modi, K. S., Schreiner, G. F., Purkerson, M. L. and S. Klahr. 1992. Effects of probucol in renal function and structure in rats with subtotal kidney ablation. J Lab Clin Med. 120310-317.
17.Montagna, G., Hofer, C. G. and A. M. Torres. 1998. Impairment of cellular redox status and membrane protein activities in kidneys from rats with ischemic acute renal failure. Biochimica et Biophysica Acta (BBA)-Molecular Basis of Disease. 1407(2): 99-108.
18.Nishikimi, M., Rao, N. A. and K. Yagi. 1972. The occurrence of superoxide anion in the reaction of reduced phenazine methosulfate and molecular oxygen. Biochemical and biophysical research communications. 46(2): 849-854.
19.Oldenburg, O., Qin, Q., Krieg, T., Yang, X.-M., Philipp, S., Critz, S. D., Cohen, M. V. and J. M. Downey. 2004. Bradykinin induces mitochondrial ROS generation via NO, cGMP, PKG, and mitoKATP channel opening and leads to cardioprotection. American Journal of Physiology-Heart and Circulatory Physiology. 286(1): H468-H476.
20.Paller, M. S., Hoidal, J. and T. F. Ferris. 1984. Oxygen free radicals in ischemic acute renal failure in the rat. Journal of Clinical Investigation. 74(4): 1156.
21.Palm, F., Cederberg, J., Hansell, P., Liss, P. and P. O. Carlsson. 2003 Reactive oxygen species cause diabetes-induced decrease in renal oxygen tension. Diabetologia. 46(8): 1153-1160.
22.Perdrizet, G. A., Giles, D. L., Dring, R., Agarwal Jr, S. K., Khwaja, K., Gao, Y. Z., Geary, M., Cowell, V. L., Berman, M. and R. Brautigam. 2006. Major hepatic trauma: warm ischemic tolerance of the liver after hemorrhagic shock. Journal of Surgical Research. 136(1): 70-77.
23.Rotruck, J., Pope, A., Ganther, H., Swanson, A., Hafeman, D. G. and W.Hoekstra. 1973. Selenium: biochemical role as a component of glutathione peroxidase. Science. 179(4073): 588-590.
24.Seth, P., Kumari, R., Madhavan, S., Singh, A. K., Mani, H., Banaudha, K. K., Sharma, S. C., Kulshreshtha, D. K. and R. K. Maheshwari. 2000. Prevention of renal ischemia–reperfusion-induced injury in rats by picroliv. Biochemical pharmacology. 59(10): 1315-1322.
25.Sheridan, A. M. and J. V.Bonventre. 2001. Pathophysiology of ischemic acute renal failure. 1327-21.
26.Taheri, Y. A., Neshat, M., Garjani, A. and N.Y. Doustar. 2012 Study the effects of metformin on renal function and structure after unilateral ischemia-reperfusion in rat. Research in Pharmaceutical Sciences. 7(5): S77.
27.Tountas, C. and R. Bergman. 1977. Tourniquet ischemia: ultrastructural and histochemical observations of ischemic human muscle and of monkey muscle and nerve. The Journal of hand surgery. 2(1): 31.
28.Unal, D., Yeni, E., Erel, O., Bitiren, M. and H.Vural. 2002. Antioxidative effects of exogenous nitric oxide versus antioxidant vitamins on renal ischemia reperfusion injury. Urological Research. 30(3): 190-194.
29.Vesey, D. A., Cheung, C., Pat, B., Endre, Z., Gobé, G. and D. W. Johnson. 2004. Erythropoietin protects against ischaemic acute renal injury. Nephrology Dialysis Transplantation. 19(2): 348-355.
30.Yamakawa, Y., Takano, M., Patel, M., Tien, N., Takada, T. and G. B. Bulkley. 2000. Interaction of platelet activating factor, reactive oxygen species generated by xanthine oxidase, and leukocytes in the generation of hepatic injury after shock/resuscitation. Annals of Surgery. 231(3): 387.
31.Yavuz, Y., Mollaoglu, H., Yürümez, Y., Ucok, K., Duran, L., Tünay, K. and L. Akgün. 2013. Therapeutic effect of magnesium sulphate on carbon monoxide toxicity-mediated brain lipid peroxidation. European review for medical and pharmacological sciences. 1728-33.

 

آمار
تعداد مشاهده مقاله: 1,214
تعداد دریافت فایل اصل مقاله: 1,096


counter
سامانه مدیریت نشریات علمی. طراحی و پیاده سازی از سیناوب