(2021). مقایسه دو روش جداسازی وزیکول‌های غشاء خارجی بردتلا پرتوسیس به عنوان کاندیدای واکسن. , 76(3), 411-419. doi: 10.22092/ari.2020.342861.1487
. "مقایسه دو روش جداسازی وزیکول‌های غشاء خارجی بردتلا پرتوسیس به عنوان کاندیدای واکسن". , 76, 3, 2021, 411-419. doi: 10.22092/ari.2020.342861.1487
(2021). 'مقایسه دو روش جداسازی وزیکول‌های غشاء خارجی بردتلا پرتوسیس به عنوان کاندیدای واکسن', , 76(3), pp. 411-419. doi: 10.22092/ari.2020.342861.1487
مقایسه دو روش جداسازی وزیکول‌های غشاء خارجی بردتلا پرتوسیس به عنوان کاندیدای واکسن. , 2021; 76(3): 411-419. doi: 10.22092/ari.2020.342861.1487

مقایسه دو روش جداسازی وزیکول‌های غشاء خارجی بردتلا پرتوسیس به عنوان کاندیدای واکسن

Archives of Razi Institute
Article 4, Volume 76, Issue 3, January 0, Pages 411-419    PDF (275.08 K)
Document Type: مقالات پژوهشی
DOI: 10.22092/ari.2020.342861.1487
Abstract
زمینه و هدف: علیرغم واکسیناسیون، پرتوسیس هم چنان یک معضل بهداشتی در سراسر جهان است. وزیکول‌های غشاء خارجی (OMVs) باکتری‌های گرم منفی با داشتن پروتئین‌های غشاء خارجی می توانند باعث تحریک سیستم ایمنی شده و جهت تهیه واکسن کاندیداهای بسیار مناسبی هستند. OMV‌های بردتلا پرتوسیس نیز حاوی آنتی ژن هایی می‌باشد که به عنوان ایمونوژن مطرح هستند و می‌توان آنها را به عنوان کاندیدای بالقوه برای تولید واکسن در نظر گرفت. هدف این مطالعه مقایسه جداسازی OMV‌ها با روش رایج (با اولتراسانتریفیوژ) و روش تغییر یافته (بدون اولتراسانتریفیوژ) و ارزیابی خصوصیات فیزیکوشیمیایی و بیان فاکتورهای اصلی بیماری‌زایی آن‌ها بود.
مواد و روش‌کار: سویه واکسینال BP134 در محیطBordet Gengo آگار کشت داده شد و برای کشت انبوه در محیطModified Stainer-Scholte تلقیح شدند. وزیکول‌ها با استفاده از دو روش استخراج شدند. وزیکول‌های بدست آمده رنگ‌آمیزی و توسط میکروسکوپ الکترونی عبوری بررسی شدند. غلظت پروتئین با استفاده از روش برادفورد اندازه‌گیری شد و سپس پروفایل پروتئینی توسطSDS-PAGE ارزیابی گردید. حضور آنتی ژن‌های ایمونوژن با وسترن بلات تشخیص داده شد.
یافته‌ها: اندازه و شکل OMVهای بدست آمده از هر دو روش مشابه و با اندازه بین 40 تا 200 نانومتر بود. بازده میزان محصول و غلظت پروتئین OMV‌‌های به دست آمده روش رایج و تغییر یافته به ترتیب µg/ml 800 و 600 بود. ارزیابی پروفایل پروتئین OMV‌های استخراج شده، وجود پروتئین‌های مختلف را نشان داد. در نهایت حضورPTX ، PRN و FHA در OMV‌های استخراج شده از هر دو روش مشاهده گردید.
نتیجه‌گیری: نتایج مقایسه دو روش جداسازی OMV، نشان داد که وزیکول های بدست آمده دارای شکل و اندازه مناسب و مشابه می‌باشند، همچنین بیان سه فاکتور بیماری زای مهم به عنوان ایمونوژن در هر دو روش مشاهده شد. علی رغم کاهش نسبی کم میزان بازدهی محصول در روش تغییر یافته با توجه به این که در روش تغییر یافته نیاز به اولتراسانتریفیوژ نیست، از این روش جداسازی میتوان به عنوان جایگزینی مناسب برای استخراج وزیکول های غشای خارجی بردتلا پرتوسیس به خصوص در کشورهای در حال توسعه استفاده نمود. لازم به ذکر است آزمایشات بیشتر شامل تعیین ایمنوژنسیتی OMVهای بدست آمده به عنوان کاندیدای واکسن در مدل های حیوانی مورد نیاز است.
Keywords
بردتلا پرتوسیس; وزیکول‌های غشاء خارجی; فاکتورهای بیماری‌زا
References
  1. Howard C. Bordetella pertussis: Epidemiology, Virulence Factors, Pathogenesis, Treatments, and Vaccines. 2016.
  2. Mooi FR. Bordetella pertussis and vaccination: the persistence of a genetically monomorphic pathogen. Infect Genet Evol. 2010;10(1):36-49.
  3. Breakwell L, Kelso P, Finley C, Schoenfeld S, Goode B, Misegades LK, et al. Pertussis Vaccine Effectiveness in the Setting of Pertactin-Deficient Pertussis. Pediatrics. 2016:e20153973.
  4. Zaretzky FR, Gray MC, Hewlett EL. Mechanism of association of adenylate cyclase toxin with the surface of Bordetella pertussis: a role for toxin–filamentous haemagglutinin interaction. Mol Microbiol. 2002;45(6):1589-98.
  5. Bolotin S, Harvill ET, Crowcroft NS. What to do about pertussis vaccines? Linking what we know about pertussis vaccine effectiveness, immunology and disease transmission to create a better vaccine. Pathog Dis. 2015;73(8):ftv057.
  6. Edwards K, editor Pertussis vaccines. 42nd Annual Meeting; 2004: Idsa.
  7. Gustafsson L, Hallander HO, Olin P, Reizenstein E, Storsaeter J. A controlled trial of a two-component acellular, a five-component acellular, and a whole-cell pertussis vaccine. N Engl J Med. 1996;334(6):349-56.
  8. Olin P, Rasmussen F, Gustafsson L, Hallander HO, Heijbel H. Randomised controlled trial of two-component, three-component, and five-component acellular pertussis vaccines compared with whole-cell pertussis vaccine. Lancet. 1997;350(9091):1569-77.
  9. Poolman JT, Hallander HO. Acellular pertussis vaccines and the role of pertactin and fimbriae. Expert Rev Vaccines. 2007;6(1):47-56.
  10. Wendelboe AM, Van Rie A, Salmaso S, Englund JA. Duration of immunity against pertussis after natural infection or vaccination. Pediatr Infect Dis J. 2005;24(5):S58-S61.
  11. Mooi FR, Van Loo I, Gent Mv, He Q, Bart MJ, Heuvelman KJ, et al. Bordetella pertussis strains with increased toxin production associated with pertussis resurgence. Emerg Infect Dis. 2009;15(8):1206-13.
  12. Bart MJ, van Gent M, van der Heide HG, Boekhorst J, Hermans P, Parkhill J, et al. Comparative genomics of prevaccination and modern Bordetella pertussis strains. BMC Genomics. 2010;11(1):627.
  13. Witt MA, Arias L, Katz PH, Truong ET, Witt DJ. Reduced risk of pertussis among persons ever vaccinated with whole cell pertussis vaccine compared to recipients of acellular pertussis vaccines in a large US cohort. Clin Infect Dis. 2013;56(9):1248-54.
  14. Mooi F, Van Der Maas N, De Melker H. Pertussis resurgence: waning immunity and pathogen adaptation–two sides of the same coin. Epidemiol Infect. 2014;142(04):685-94.
  15. Roberts R, Moreno G, Bottero D, Gaillard ME, Fingermann M, Graieb A, et al. Outer membrane vesicles as acellular vaccine against pertussis. Vaccine. 2008;26(36):4639-46.
  16. Gaillard ME, Bottero D, Errea A, Ormazábal M, Zurita ME, Moreno G, et al. Acellular pertussis vaccine based on outer membrane vesicles capable of conferring both long-lasting immunity and protection against different strain genotypes. Vaccine. 2014;32(8):931-7.
  17. Nikbin VS, Shahcheraghi F, Lotfi MN, Zahraei SM, Parzadeh M. Comparison of culture and real-time PCR for detection of Bordetella pertussis isolated from patients in Iran. Iran J Microbiol. 2013;5(3):209-214.
  18. Hozbor D, Rodriguez M, Fernandez J, Lagares A, Guiso N, Yantorno OJCm. Release of outer membrane vesicles from Bordetella pertussis. Curr Microbiol. 1999;38(5):273-8.
  19. Sealey KL, Belcher T, Preston A. Bordetella pertussis epidemiology and evolution in the light of pertussis resurgence. Infect Genet Evol. 2016;40:136-43.
  20. Bottero D, Gaillard M, Zurita E, Moreno G, Martinez DS, Bartel E, et al. Characterization of the immune response induced by pertussis OMVs-based vaccine. Vaccine. 2016;34(28):3303-9.
  21. Sandbu S, Feiring B, Oster P, Helland OS, Bakke HS, Næss LM, et al. Immunogenicity and safety of a combination of two serogroup B meningococcal outer membrane vesicle vaccines. Clin Vaccine Immunol. 2007;14(9):1062-9.
  22. de Kleijn ED, de Groot R, Labadie J, Lafeber AB, van den Dobbelsteen G, van Alphen L, et al. Immunogenicity and safety of a hexavalent meningococcal outer-membrane-vesicle vaccine in children of 2–3 and 7–8 years of age. Vaccine. 2000;18(15):1456-66.
  23. Nøkleby H, Aavitsland P, O’hallahan J, Feiring B, Tilman S, Oster P. Safety review: two outer membrane vesicle (OMV) vaccines against systemic Neisseria meningitidis serogroup B disease. Vaccine. 2007;25(16):3080-4.
  24. Van de Waterbeemd B, Streefland M, Van der Ley P, Zomer B, Van Dijken H, Martens D, et al. Improved OMV vaccine against Neisseria meningitidis using genetically engineered strains and a detergent-free purification process. Vaccine. 2010;28(30):4810-6.
  25. Thornton V, Lennon D, Rasanathan K, O’hallahan J, Oster P, Stewart J, et al. Safety and immunogenicity of New Zealand strain meningococcal serogroup B OMV vaccine in healthy adults: beginning of epidemic control. Vaccine. 2006;24(9):1395-400.
  26. Bottero D, Gaillard ME, Errea A, Moreno G, Zurita E, Pianciola L, et al. Outer membrane vesicles derived from Bordetella parapertussis as an acellular vaccine against Bordetella parapertussis and Bordetella pertussis infection. Vaccine. 2013;31(45):5262-8.
  1. Hozbor DF. Outer membrane vesicles: an attractive candidate for pertussis vaccines. Expert Rev Vaccines. 2017;16(3):193-6.
  2. Shrivastava R, Miller JF. Virulence factor secretion and translocation by Bordetella species. Curr Opin Microbiol. 2009;12(1):88-93.
  3. Pawloski L, Queenan A, Cassiday P, Lynch A, Harrison M, Shang W, et al. Prevalence and molecular characterization of pertactin-deficient Bordetella pertussis in the United States. Clin Vaccine Immunol. 2014;21(2):119-25.
30. Smith AM, Guzmán CA, Walker MJ. The virulence factors of Bordetella pertussis: a matter of control. FEMS Microbiol Rev. 2001;25(3):309-33.

Statistics
Article View: 2,009
PDF Download: 980


counter
Journal management system. designed by sinaweb