(2021). تداخل مرکزی سیستم های گلوتاماترژیک و هیستامینرژیک مرکزی در تنظیم اخذ غذا در جوجه های تخمگذار. , 76(3), 537-551. doi: 10.22092/ari.2020.351260.1513
. "تداخل مرکزی سیستم های گلوتاماترژیک و هیستامینرژیک مرکزی در تنظیم اخذ غذا در جوجه های تخمگذار". , 76, 3, 2021, 537-551. doi: 10.22092/ari.2020.351260.1513
(2021). 'تداخل مرکزی سیستم های گلوتاماترژیک و هیستامینرژیک مرکزی در تنظیم اخذ غذا در جوجه های تخمگذار', , 76(3), pp. 537-551. doi: 10.22092/ari.2020.351260.1513
تداخل مرکزی سیستم های گلوتاماترژیک و هیستامینرژیک مرکزی در تنظیم اخذ غذا در جوجه های تخمگذار. , 2021; 76(3): 537-551. doi: 10.22092/ari.2020.351260.1513

تداخل مرکزی سیستم های گلوتاماترژیک و هیستامینرژیک مرکزی در تنظیم اخذ غذا در جوجه های تخمگذار

Archives of Razi Institute
Article 17, Volume 76, Issue 3, January 0, Pages 537-551    PDF (621.86 K)
Document Type: مقالات پژوهشی
DOI: 10.22092/ari.2020.351260.1513
Abstract
هدف از این مطالعه بررسی تداخل سیستم‌های گلوتاماترژیک و هیستامینرژیک مرکزی در تنظیم اخذ غذا در جوجه‌های نژاد تخمگذار بود. در آزمایش 1، جوجه‌ها، تزریقات داخل بطن مغزی (ICV) سالین، گلوتامات (300 نانومول)، α-FMH (250 نانومول) و گلوتامات + α-FMH را دریافت کردند. آزمایشات 2 تا 6 مشابه آزمایش 1 بود استثنا اینکه جوجه‌ها تزریق کلرفرنیرآمین (آنتاگونیست گیرنده H1، 300 نانومول)، فاموتیدین (آنتاگونیست گیرنده H2، 82 نانومول) و تیوپرامیاید (آنتاگونیست گیرنده H3، 300 نانومول) را بجای α-FMH دریافت کردند. در آزمایش 5، جوجه‌ها، تزریقات سالین، هیستامین (300 نانومول)، MK- 801 (آنتاگونیست رسپتور NMDA، دوز 15 نانومول) و هیستامین + MK- 801را دریافت کردند. آزمایشات 6 تا 10 مشابه آزمایش 5 بود استثنا اینکه جوجه-ها تزریق CNQX (آنتاگونیست گیرنده AMPA، 390 نانومول)، UBP-302 (آنتاگونیست گیرنده Kainate، 390 نانومول)، AIDA(آنتاگونیست گیرنده mGluR1 ، 2 نانومول)، LY341495 (آنتاگونیست گیرنده mGluR2 ، 150 نانومول)، UBP1112 (آنتاگونیست گیرنده mGluR3 ، 2 نانومول) را بجای MK-801 دریافت کردند. سپس مصرف تجمعی غذا تا 120 دقیقه بعد از تزریق اندازه‌گیری شد. با توجه به نتایج ، تزریق گلوتامات (300 نانومول) موجب کاهش مصرف غذا در جوجه‌ها شد (p≤0.05). تزریق همزمان گلوتامات + α-FMH موجب کاهش هیپوفاژی ناشی از تزریق گلوتامات شد (p≤0.05). تزریق توام کلرفرنیرآمین + گلوتامات موجب مهار هیپوفاژی ناشی از تزریق گلوتامات شد (p≤0.05). تزریق توام تیوپرامیاید و گلوتامات موجب تقویت هیپوفاژی ناشی از تزریق ال گلوتامات شد (p≤0.05). تزریق داخل بطنی مغزی هیستامین (300 نانومول) موجب کاهش مصرف غذا در جوجه‌ها شد (p≤0.05). تزریق توام هیستامین و MK- 801 موجب مهار هیپوفاژی ناشی از هیستامین شد (p≤0.05). تزریق توام هیستامین و BP-302 موجب مهار هیپوفاژی ناشی از تزریق هیستامین شد (p≤0.05). تزریق توام هیستامین و LY341495 موجب تقویت هیپوفاژی ناشی از هیستامین شد (p≤0.05). نتایج نشان دهنده این بود که تنظیم اشتهای ناشی از این دو سیستم از طریق گیرنده‌های گیرنده H1، گیرنده H3 هیستامینی و گیرنده‌های NMDA، Kainate و mGluR2 گلوتاماتی در جوجه‌های نژاد تخمگذار میانجی‌‌گری می-شود.
Keywords
گلوتامات; هیستامین; مصرف خوراک; جوجه نژاد تخمگذار
References
  1. Yousefvand S, Hamidi F, Zendehdel M, Parham A. Interaction of neuropeptide Y receptors (NPY1, NPY2 and NPY5) with somatostatin on somatostatin-induced feeding behaviour in neonatal chicken. Br Poult Sci. 2019;60(1):71-8.
  2. Hassanpour S, Zendehdel M, Babapour V, Charkhkar S. Endocannabinoid and nitric oxide interaction mediates food intake in neonatal chicken. Br Poult Sci. 2015;56(4):443-51.
  3. Parker KE, Johns HW, Floros TG, Will MJ. Central amygdala opioid transmission is necessary for increased high-fat intake following 24-h food deprivation, but not following intra-accumbens opioid administration. Behav Brain Res. 2014;260:131-8.
  4. Blandina P, Provensi G, Munari L, Passani MB. Histamine neurons in the tuberomamillary nucleus: a whole center or distinct subpopulations? Front Syst Neurosci. 2012;6(33).
  5. Giannoni P, Passani M-B, Nosi D, Chazot PL, Shenton FC, Medhurst AD, et al. Heterogeneity of histaminergic neurons in the tuberomammillary nucleus of the rat. Eur J Neurosci. 2009;29(12):2363-74.
  6. Schneider EH, Neumann D, Seifert R. Modulation of behavior by the histaminergic system: Lessons from HDC-, H3R- and H4R-deficient mice. Neurosci Biobehav Rev. 2014;47:101-21.
  7. Rafiei M, Taati M, Alavi S, Nayebzadeh H, Zendehdel M. Effects of intracerebroventricular injection of histamine and H1, H2 receptor antagonists on electrocardiographic parameters in broiler chickens. Iranian J Vet Res. 2011;12 (3):192-8.
  8. Rozov SV, Zant JC, Karlstedt K, Porkka-Heiskanen T, Panula P. Periodic properties of the histaminergic system of the mouse brain. Eur J Neurosci 2014;39(2):218-28.
  9. Morimoto T, Yamamoto Y, Yamatodani A. Brain histamine and feeding behavior. Behavioural Brain Research. Behav Brain Res. 2001;124(2):145-50.
  10. Taati M, Babapour V, Kheradmand A, Tarrahi MJ. The role of central endogenous histamine and H1, H2 and H3 receptors on food intake in broiler chickens. Iranian J Vet Res 2009;10(1):54-60.
  11. Irwin N, Hunter K, Frizzell N, Flatt PR. Antidiabetic effects of sub-chronic administration of the cannabinoid receptor (CB1) antagonist, AM251, in obese diabetic (ob/ob) mice. Eur J Pharmacol. 2008;581(1):226-33.
  12. Charles JR, Duva MA, Ramirez GJ, Lara RL, Yang CR, Stanley BG. Activation of lateral hypothalamic mGlu1 and mGlu5 receptors elicits feeding in rats. Neuropharmacology. 2014;79:59-65.
  13. McFadden KL, Cornier M-A, Tregellas JR. The role of alpha-7 nicotinic receptors in food intake behaviors. Front Psychol. 2014;5(553).
  14. Da Silva AA, Marino-Neto J, Paschoalini MA. Feeding induced by microinjections of NMDA and AMPA–kainate receptor antagonists into ventral striatal and ventral pallidal areas of the pigeon. Brain Res. 2003;966(1):76-83.
  15. Taati M, Nayebzadeh H, Zendehdel M. The effects of DL-AP5 and glutamate on ghrelin-induced feeding behavior in 3-h food-deprived broiler cockerels. J Physiol Biochem. 2011;67(2):217-23.
  16. García-Gálvez AM, Arias-Montaño JA. Isoforms of the human histamine H3 receptor: Generation, expression in the central nervous system and functional implications. Gaceta medica de Mexico. Gac Med Mex 2016;152:82-90.
  17. Brown RE, Stevens DR, Haas HL. The physiology of brain histamine. Prog Neurobiol. 2001;63(6):637-72.
  18. Garduño-Torres B, Treviño M, Gutiérrez R, Arias-Montaño J-A. Pre-synaptic histamine H3 receptors regulate glutamate, but not GABA release in rat thalamus. Neuropharmacology. 2007;52(2):527-35.
  19. Zendehdel M, Ebrahimi-Yeganeh A, Hassanpour S, Koohi MK. Interaction of the dopaminergic and Nociceptin/Orphanin FQ on central feed intake regulation in chicken. Br Poult Sci. 2019;60(3):317-22.
  20. Zendehdel M, Hassanpour S. Ghrelin-induced hypophagia is mediated by the β2 adrenergic receptor in chicken. J Physiol Sci. 2014;64(5):383-91.
  21. Olanrewaju HA, Purswell J, Collier SD, Branton SL. Effects of light ingress through ventilation fan apertures on selected blood variables of male broilers. Int J Poult Sci 2017;16:288-95.
  22. Blevins JE, Stanley BG, Reidelberger RD. DMSO as a vehicle for central injections: tests with feeding elicited by norepinephrine injected into the paraventricular nucleus. Pharmacol Biochem Behav. 2002;71(1):277-82.
  23. Qi W, Ding D, Salvi RJ. Cytotoxic effects of dimethyl sulphoxide (DMSO) on cochlear organotypic cultures. Hear Res. 2008;236(1):52-60.
  24. Davis JL, Masuoka DT, Gerbrandt LK, Cherkin A. Autoradiographic distribution of L-proline in chicks after intracerebral injection. Physiol Behav. 1979;22(4):693-5.
  25. Furuse M, Matsumoto M, Saito N, Sugahara K, Hasegawa S. The central corticotropin-releasing factor and glucagon-like peptide-1 in food intake of the neonatal chick. Eur J Pharmacol. 1997;339(2):211-3.
  26. Saito E-S, Kaiya H, Tachibana T, Tomonaga S, Denbow DM, Kangawa K, et al. Inhibitory effect of ghrelin on food intake is mediated by the corticotropin-releasing factor system in neonatal chicks. Regul Pept. 2005;125(1):201-8.
  27. Furuse M, Ando R, Bungo T, Shimojo M, Masuda Y. Intracerebroventricular injection of orexins does not stimulate food intake in neonatal chicks. Br Poult Sci. 1999;40(5):698-700.
  28. Baghbanzadeh A, Babapour V. Glutamate ionotropic and metabotropic receptors affect feed intake in broiler cockerels. J Vet Res. 2007;62(4):125-9.
  29. Zendehdel M, Baghbanzadeh A, Babapour V, Cheraghi J. The effects of bicuculline and muscimol on glutamate-induced feeding behavior in broiler cockerels. J Comp Physiol A Neuroethol Sens Neural Behav Physiol. 2009;195(8):715-20.
  30. Zendehdel M, Hamidi F, Hassanpour S. The Effect of Histaminergic System on Nociceptin/Orphanin FQ Induced Food Intake in Chicken. Int J Pept Res Ther. 2015;21(2):179-86.
  31. Meade S, Denbow DM. Feeding, drinking, and temperature responses of chickens to intracerebroventricular histamine. Physiol Behav. 2001;73(1):65-73.
  32. Passani MB, Blandina P, Torrealba F. The histamine H3 receptor and eating behavior. J Pharmacol Exp Ther 2011;336(1):24-9.
  33. Hancock AA, Brune ME. Assessment of pharmacology and potential anti-obesity properties of H3 receptor antagonists/inverse agonists. Expert Opin Investig Drugs. 2005;14(3):223-41.
  34. Duva MA, Siu A, Stanley BG. The NMDA receptor antagonist MK-801 alters lipoprivic eating elicited by 2-mercaptoacetate. Physiol Behav. 2005;83(5):787-91.
  35. Ciranna L. Serotonin as a modulator of glutamate- and GABA-mediated neurotransmission: implications in physiological functions and in pathology. Curr Neuropharmacol. 2006;4(2):101-14.
  36. Faucard R, Armand V, Héron A, Cochois V, Schwartz J-C, Arrang J-M. N-methyl-d-aspartate receptor antagonists enhance histamine neuron activity in rodent brain. J Neurochem. 2006;98(5):1487-96.
  37. Fell MJ, Katner JS, Johnson BG, Khilevich A, Schkeryantz JM, Perry KW, et al. Activation of metabotropic glutamate (mGlu)2 receptors suppresses histamine release in limbic brain regions following acute ketamine challenge. Neuropharmacology. 2010;58(3):632-9.
  38. Okakura-Mochizuki K, Mochizuki T, Yamamoto Y, Horii A, Yamatodani A. Endogenous GABA Modulates Histamine Release from the Anterior Hypothalamus of the Rat. J Neurochem. 1996;67(1):171-6.
  39. Haas HL, Sergeeva OA, Selbach O. Histamine in the Nervous System. Physiol Rev. 2008;88(3):1183-241.
  40. Fell MJ, Flik G, Dijkman U, Folgering JHA, Perry KW, Johnson BJ, et al. Glutamatergic regulation of brain histamine neurons: In vivo microdialysis and electrophysiology studies in the rat. Neuropharmacology.
    2015;99:1-8.
  41. Yu X, Ye Z, Houston Catriona M, Zecharia Anna Y, Ma Y, Zhang Z, et al. Wakefulness Is Governed by GABA and Histamine Cotransmission. Neuron. 2015;87(1):164-78.
  42. Ellender TJ, Huerta-Ocampo I, Deisseroth K, Capogna M, Bolam JP. Differential Modulation of Excitatory and Inhibitory Striatal Synaptic Transmission by Histamine. J Neurosci. 2011;31(43):15340-51.
  1. Prast H, Tran MH, Fischer H, Kraus M, Lamberti C, Grass K, et al. Histaminergic neurons modulate acetylcholine release in the ventral striatum: role of H3 histamine receptors. Naunyn Schmiedebergs Arch Pharmacol. 1999;360(5):558-64.
  2. Osorio-Espinoza A, Alatorre A, Ramos-Jiménez J, Garduño-Torres B, García-Ramírez M, Querejeta E, et al. Pre-synaptic histamine H3 receptors modulate glutamatergic transmission in rat globus pallidus. Neuroscience. 2011;176:20-31.
Statistics
Article View: 1,474
PDF Download: 589


counter
Journal management system. designed by sinaweb