| تعداد نشریات | 285 |
| تعداد نشریات سازمان | 83 |
| تعداد شمارهها | 3,094 |
| تعداد مقالات | 34,531 |
| تعداد مشاهده مقاله | 49,366,791 |
| تعداد دریافت فایل اصل مقاله | 79,811,337 |
مطالعه پیشتیمار اسید آسکوربیک بر شاخصهای جوانهزنی و بیوشیمیایی بذرهای علف بره (Festuca ovina) تحت تنش خشکی | ||
| علوم و فناوری بذر ایران | ||
| مقاله 4، دوره 10، شماره 1 - شماره پیاپی 21، فروردین 1400، صفحه 29-42 اصل مقاله (877.51 K) | ||
| نوع مقاله: مقاله پژوهشی | ||
| شناسه دیجیتال (DOI): 10.22092/ijsst.2020.128242.1303 | ||
| نویسندگان | ||
| حسین رضا روحی1؛ محمد حسن وفائی* 2؛ مریم ثمن3؛ علی رضا شاهبداغلو4 | ||
| 1گروه اگروتکنولوژی،دانشکده کشاورزی،دانشگاه بوعلی سینا،همدان | ||
| 2گروه اگروتکنولوژی-دانشکده کشاورزی-دانشگاه بوعلی سینا-همدان | ||
| 3عضو هیئت علمی گروه علوم کشاورزی، دانشگاه پیام نور، تهران، ایران | ||
| 4کارشناس آزمایشگاه گروه علوم باغبانی، دانشکده کشاورزی، دانشگاه بوعلی سینا | ||
| چکیده | ||
| جوانهزنی بذر از بحرانیترین مراحل چرخه زندگی گیاه بوده که بهشدت تحت تاثیر تنش خشکی قرار میگیرد. در این راستا اثر اسید آسکوربیک در بهبود وضعیت جوانهزنی و فعالیت آنزیمهای آنتی اکسیدان بذرهای علف بره تحت تنش خشکی طی آزمایشی بهصورت فاکتوریل در قالب طرح کاملاً تصادفی با سه تکرار بررسی شد. بذرهای پیشتیمار نشده (شاهد) و پیشتیمار شده با اسید آسکوربیک در غلظتهای صفر (هیدروپرایمینگ)، 1 و 2 میلیمولار و سطوح خشکی صفر، 4/0-، 8/0- و 2/1- مگاپاسکال مورد ارزیابی قرار گرفت. نتایج نشان داد که پیشتیمار بذرها با اسید آسکوربیک در سطوح مختلف خشکی موجب افزایش درصد جوانهزنی، بنیه بذر، طول ساقهچه، طول ریشهچه،کربوهیدراتهای محلول، پروتئینهای محلول و فعالیت آنزیمهای کاتالاز، سوپراکسید دیسموتاز و آسکوربات پراکسیداز و کاهش متوسط زمان جوانهزنی، هدایت الکتریکی و محتوای مالون دیآلدهید شد. در پتانسیل 2/1- مگاپاسکال، پیشتیمار بذر با غلظت-های 1 و 2 میلیمولار اسید آسکوربیک سبب افزایش شاخص بنیه بذر،کربوهیدراتها و پروتئینهای محلول بهترتیب به-میزان 03/167، 26/22، 77/35 و 91/187، 61/22 ،20/30 درصد و همچنین افزایش فعالیت آنزیمهای کاتالاز، سوپراکسید دیسموتاز و آسکوربات پراکسیداز بهترتیب به میزان 85/11، 81/22، 25/12 و 83/13، 33/31 ، 93/9 درصد شد. بنابراین استفاده از اسید آسکوربیک در غلظتهای 1 و 2 میلیمولار جهت کاهش اثرات منفی ناشی تنش خشکی قابل توصیه است. | ||
| کلیدواژهها | ||
| آسکوربات پراکسیداز؛ بنیه بذر؛ پیشتیمار؛ هدایت الکتریکی | ||
| عنوان مقاله [English] | ||
| Study of ascorbic acid priming on germination and biochemical indexes of sheep fescue (Festuca ovina) seeds under drought stress | ||
| نویسندگان [English] | ||
| Hossein Reza Rouhi1؛ mohammad hasan vafaei2؛ Maryam Saman3؛ Alireza Shahbodaghlo4 | ||
| 1Department of Agrotechnology,Faculty of Agriculture,Bu Ali Sina University,Hamedan | ||
| 2Department of Agrotechnology-Faculty of Agriculture-Bu Ali Sina University-Hamedan | ||
| 3Payame Noor University, Department of Agricultural Sciences, Tehran, Iran | ||
| 4Laboratory expert, of Department of Horticultural Science, Faculty of Agriculture, Bu Ali Sina University | ||
| چکیده [English] | ||
| Germination of seeds, one of the most critical stages of plant cycle is greatly influenced by drought stress. In this way, the effects of ascorbic acid to improve germination and antioxidant enzyme activities in sheep fescue seeds under drought stress were studied. A factorial experiment based on completely randomized design with three replications was done. None- primed seed (control group) and priming of different concentrations of ascorbic acid (0, 1 and 2 mM) under 0, -0.4, -0.8 and -1.2 MPa drought stress levels were evaluated. The results showed that seed priming with ascorbic acid in different drought levels increased some traits such as germination percentage, vigour index, plumule and radicle length, soluble carbohydrates and protein contents and antioxidant enzymes activities (catalase, superoxide dismutase and ascorbate peroxidase). While it decreased mean germination time, electrical conductivity and malondialdehyde content in comparison to nonprime seeds. So seed priming with 1 and 2 mM of ascorbic acid in -1.2 MPa level increased vigour index, soluble carbohydrates and proteins, respectively by 167.03, 22.26, 35.77, 187.91, 22.61 and 30.20% compared to nonprimed seeds. Also, it increased activity of catalase, superoxide dismutase and ascorbate peroxidase, respectively by 11.85, 22.81, 12.25, 13.83, 31.33 and 9.93% compared to non-primed seeds. Therefore, the use of 1 and 2 mM ascorbic acid concentrations to reduce the negative effects caused by drought stress is recommended. | ||
| کلیدواژهها [English] | ||
| ascorbate peroxidase, seed vigour, priming, electrical conductivity | ||
| مراجع | ||
|
Afzal, I., S.M.A. Basra, M. Faooq, and A. Nawaz. 2006. Alleviationof salinity stress in spring wheat by hormonal priming withABA, salicylic acid and ascorbic acid. Int. J. Agric. Biol. 8: 23-28. Ahmad, I., T. Khaliq, A. Ahmad, S.M.A. Basra, Z. Hasnain, and A. Ali. 2012. Effect of seed priming with ascorbic acid, salicylic acid and hydrogen peroxide on emergence, vigor and antioxidant activities of maize. Afr. J. Biotechnol. 11(5): 1127-1132. Azooz, M.M., A.M. Alzahrani, and M.M. Youssef. 2013. The potential role of seed priming with ascorbic acid and nicotinamide and their interactions to enhance salt tolerance in broad bean (Vicia faba L.). Aust. J. Crop Sci. 7: 2091-2100. Behairy, R.T., M. El-Danasoury, and L. Craker. 2012. Impact of ascorbic acid on seed germination, seedling growth, and enzyme activity of salt-stressed Fenugreek.J. Medic. Active Plants. 1(3): 106-113. Bradford, M.M. 1976. A dye binding assay for protein. Analyt Biochem.72: 248-254. Cakmak, I., and W. Horst. 1991. Effect of aluminium on lipid peroxidation, superoxide dismutase, catalase and peroxidase activities in root tip of soybean (Glycine max). Plant Physiol. 83: 463–468. Cavalcanti, F.R., J.T.A. Oliveira, A.S. Martins-Miranda, R.A. Viégas, and J.A.G. Silveira. 2004. Superoxide dismutase, catalase and peroxidase activities do not confer protection against oxidative damage in salt-stressed cowpeas leaves. New Phytol. 163: 563–571. El-Bassiouny, H.M.S, and M.S. Sadak. 2015. Impact of foliar application of ascorbic acid and alpha-tocopherol on antioxidant activity and some biochemical aspects of flax cultivars under salinity stress.Acta Biol. Colomb. 20: 209-222. Ellis, R.A., and E.H. Roberts, 1981. The quantification of ageing and survival in orthodox seeds. Seed Sci. Technol. 9: 373–409. FitzGerald, A., and T. R. Hodkinson. 2017. The diploid Festuca ovina subsp. ovina (Poaceae) confirmed cytologically for Ireland, New J. Bot. 7: 182-183. Giannopolitis, C., and S. Ries. 1977. Superoxid desmutase. I: Occurence in higher plant, Plant Physiol. 59: 309–314. Hafez, E.M., and H.S. Gharib. 2016. Effect of exogenous application of ascorbic acid on physiological and biochemical characteristics of wheat under water stress. Int. J. Plant Prod. 10: 579-596. Hameed, A., S. Gulzar, I. Aziz, T. Hussain, B. Gu, and M. Ajmal Khan. 2015. Effects of salinity and ascorbic acid on growth, water status and antioxidant system in a perennial halophyte. AoB Plants. 7: 1-11. Hampton, J.G., and D.M. TeKrony. 1995. Handbook of Vigour Test Methods. The international Seed Testing Association, Zurikh. Heydariyan, M., N. Basirani, M. Sharifi-Rad, I. Khmmari, and S. Rafat Poor. 2014. Effect of seed priming on germination and seedling growth of the caper (Capparis spinosa) under drought stress. Int. J. Adv. Biol. Biomed. Res. 2 (8): 2381-2389. Irigoyen, J.J., D.W. Emerich, and M. Sanchez-Diaz. 1992. Water stress induced changes in concentrations of proline and total soluble sugars in nodulated alfalfa (Medicago sativa) plants. Physiol. Plant. 84: 55-60. ISTA. 2007. International Rules for Seed Testing. Seed Sci. Technol. 13: 299–520. Jisha, K.C., K. Vijayakumari, and J.T. Puthur. 2013. Seed priming for abiotic stress tolerance: an overview. Acta Physiol. Plant. 35: 1381–1396. Kata, L.P., M. Bhaskaran, and R. Umarani. 2014. Influence of priming treatments on stress tolerance during seed germination of rice.Int. J. Agric. Environ. Biotechnol. 7: 225-32. Khan, M.B., M.A. Gurchani, M. Hussain, S. Freed, and K. Mahmood. 2011. Wheat seed enhancement by vitamin and hormonal priming. Pak. J. Bot. 43: 1495.1499. López, L.V.P., A.R. Rodríguez, M.E.S. Coronado, P.E.M. Hernández, and A.O. Segovia. 2016. Effects of hydropriming treatments on the invigoration of aged Dodonaea viscosa seeds and water-holding polymer on the improvement of seedling growth in a lava field. Restoration Ecol. 24 (1): 61.70. Mazid, M., T.A. Khan, Z.H. Khan, S. Quddusi, and F. Mohammad. 2011. Occurrence, biosynthesis and potentialities of ascorbic acid in plants.Int. J. Plant Anim. Environ. Sci. 1: 167-184. Michel, B.E., and M.R. Kaufmann. 1973. The osmotic potential of polyethylene glycol 6000. Plant Physiol. 51: 914-916. Nakano, Y., and K. Asada. 1981. Hydrogen peroxide scavenged by ascrobate-specific peroxidase in spinach chloroplast. Plant Cell Physiol. 22: 867–880. Rouhi, H.R. 2009. The effects of Hydropriming and Osmopriming on germination traits of four pasture forage plant species under dryness and low temperature stresses. Msc. Thesis. Univ. of Tehran, St Zobahan, Karaj, Iran. (In Persian, with English Abstract) Sepehri, A., and H.R. Rouhi. 2016. Enhancement of seed vigor performance in aged groundnut (Arachis hypogaea L.) seeds by sodium nitroprusside under drought stress. Philipp. Agric. Scientist. 99(4): 339-347. Shao, H.B., L. Y. Chu, G. Wu, J. H. Zhang, Z.H. Lu, and Y.C. Hu. 2007. Changes of some anti-oxidative physiological indices under soil water deficits among 10 wheat (Triticum aestivum L.) genotypes at tillering stage. Colloids Surface. B.: Biointerf 54(2): 143-149. Varier, A., A.K., Vari, and M. Dadlani. 2010. The subcellular basis of seed priming. Curr. Sci. 99(4): 450-456. Wang, J., Z. Zhang, and R. Huang. 2013. Regulation of ascorbic acid synthesis in plants. Plant Signal Behav. 8: 1559-2324. Xu, Y., Q. Xu, and B. Huang. 2015. Ascorbic acid mitigation of water stress inhibition of root growth inassociation with oxidative defense intall fescue (Festuca arundinacea Schreb.). Front. Plant. Sci. 6: 807. Younis, M.E., M.N.A. Hasaneen, and A.M.S. Kazamel. 2010. Exogenously applied ascorbic acid ameliorates detrimental effects of NaCl and mannitol stress in Vicia faba seedlings. Protoplasma.239: 39–48. | ||
|
آمار تعداد مشاهده مقاله: 564 تعداد دریافت فایل اصل مقاله: 548 |
||