توسلی, نیما, کفایت, مرضیه, نام آوری, محمد مهدی. (1401). ارزیابی سیستم ایمنی موش‌های BALB/c در برابر فرم لیوفلیزه نئوسپورا کانینوم. سامانه مدیریت نشریات علمی, 35(2), 43-48. doi: 10.22092/vj.2021.128767.1672
نیما توسلی; مرضیه کفایت; محمد مهدی نام آوری. "ارزیابی سیستم ایمنی موش‌های BALB/c در برابر فرم لیوفلیزه نئوسپورا کانینوم". سامانه مدیریت نشریات علمی, 35, 2, 1401, 43-48. doi: 10.22092/vj.2021.128767.1672
توسلی, نیما, کفایت, مرضیه, نام آوری, محمد مهدی. (1401). 'ارزیابی سیستم ایمنی موش‌های BALB/c در برابر فرم لیوفلیزه نئوسپورا کانینوم', سامانه مدیریت نشریات علمی, 35(2), pp. 43-48. doi: 10.22092/vj.2021.128767.1672
توسلی, نیما, کفایت, مرضیه, نام آوری, محمد مهدی. ارزیابی سیستم ایمنی موش‌های BALB/c در برابر فرم لیوفلیزه نئوسپورا کانینوم. سامانه مدیریت نشریات علمی, 1401; 35(2): 43-48. doi: 10.22092/vj.2021.128767.1672
ارزیابی سیستم ایمنی موش‌های BALB/c در برابر فرم لیوفلیزه نئوسپورا کانینوم
2گروه انگل شناسی ، واحدکرج، دانشگاه آزاداسلامی، کرج، ایران
3موسسه رازی شعبه شیراز. شیراز. ایران
چکیده
در این مطالعه، هدف بررسی اثر لیوفلیزاسیون روی سوش تخفیف حدت‌یافته در مقایسه با سوش حاد در ایجاد پاسخ ایمنی در موش BALB/c میباشد. بدین منظور 40 سر موش BALB/c در پنج گروه هشت‌تایی تقسیم شدند. گروه اول سوش حاد NC1، گروه دوم سوش حاد NC1به صورت لیوفلیزه، گروه سوم سوش تخفیف حدت یافته NCR، گروه چهارم سوش تخفیف حدت NCR به صورت لیوفلیزه و گروه پنجم گروه کنترل. برای انجام آزمون‌های الایزا و اینترفرون گاما سه هفته پس از تزریق، خون‌گیری صورت گرفت. نتایج نشان دادند که سیستم ایمنی هومورال به خوبی عمل کرده است و در هر چهار گروه ایمن شده پاسخ ایمنی هومورال نسبت به گروه کنترل تفاوت معنی‌دار دارد (05/0>P value). این مطالعه نشان داد که سوش تخفیف حدت‌یافته به خوبی قادر به ایجاد پاسخ ایمنی هومورال و ایمنی سلولی میباشد و می‌تواند به عنوان کاندیدی مناسب جهت مطالعات بیشتر برای تولید واکسن مطرح گردد.
Evaluation of immune response of BALB/c mice against lyophilized form of Neospora caninum
نویسندگان [English]
N tavassoli1؛ M kefayat2؛ M.M Namavari3
1Karaj branch,Islamic azad university,karaj, iran
2department of Parasitology, karaj branch, Islamic azad university,karaj, iran
3Razi Vaccine and Serum Research Institute Shiraz, Shiraz,, Iran
چکیده [English]
The aim of this study was to investigate the effect of lyophilization on which strain in comparison with acute strain in the development of immune response in BALB/c mice. To this end, 40 BALB/c mice were divided into 5 groups each of 8 heads. The first group: NC1 (acute strain), the second group: lyophilized NC1 (acute strain), the third group: NCR (attenuated strain), the fourth group: lyophilized NCR (attenuated strain), and the fifth group: control. Three weeks after induction of vaccines, blood sampling was performed for ELISA and interferon-gamma tests. The results showed that the hemorrhagic immune system performed well (P <0.05, OR (CI95%)), and all four immunosuppressed groups had a significant difference in humoral immune response compared to the control group. An important result was the interferon test, which revealed that the lyophilized form in the acute strain had no significant difference in the level of interferon gamma compared to the control group, while lyophilized attenuated strain also had a significant difference between the levels of IFN-γ compared to the control (P <0.05, OR (CI95%)). This study showed that the lyophilized attenuated strain N.caninum is also able to produce a humoral and cell mediated immune and can be considered as an appropriate candidate for further studies on vaccine production.
1. Dubey. J.P. 2003. Review of Neospora caninum and neosporosis in animal. The Korean Journal of Parasitology 41: 1-16. 2. Gondim. L.F.P. M.M. McAllister. W.C. Pitt. and D.E. Zemlicka. 2004a. Coyotes (Canislatrans) are definitive hosts of Neospora caninum. International Journal for Parasitology 34, 159–161 3. Reichel, M.P., J.T. Ellis, and J.P.Dubey. 2007. Neosporosis and hammondiosis in dogs. Journal of Small Animal Practice, 48: 308– 312. 4. Moore, D. P., A. Perez, S. Agliano, M. Brace, G. Canton, D. Cano, M. R. Leunda, Odeon, A. C. E. Odriozola, and C. M. Campero. 2009. Risk factors associated with Neospora caninum infections in cattle in Argentina. Veterinary Parasitology 161, 122–125. 5. McFadden. G.I. . 2011. The apicoplast. Protoplasma 248, 641–650. 6. Williams. D.J.. C.S. Guy. J.W. McGarry. F. Guy. L. Tasker. R.F. Smith. K. MacEachern. P.J. Cripps. D.F. Kelly and A. J. Trees .2000. Neospora caninum-associated abortion in cattle: the time of experimentally-induced parasitaemia during gestation determines foet.al survival. Parasitology, 121: 347–358. 7. Beigi. P.. M.M. Namavari and N. Razmi. 2017. Study on the attenuation of Neospora caninum after continuous passage on J774 cell line.Veterinary Journal (Pajouhesh and Sazandegi), 115: 128-135. 8. Liddel. S. C. Parker. B. Vinyard. M. Jenkins and J.P. Dubey . 2003. Immunization of mice with plasmid DNA coding for NcGRA7 or NcsHSP33 confers partial protection against vertical transmission of Neospora caninum. J Parasitol 89: 496-500. 9. Davison. A.. A. Otter. and J. Trees. 1999a. “Estimation of verticaland horizontal transmission parameters of Neospora caninum infections in dairy cattle,” International Journal for Parasitology,29(10), 1683–1689. 10. Michael. P., M. Reichel, A.A. Alejandra, F.P. Luís Gondim and J. T. Ellis. 2013. What is the global economic impact of Neospora caninum in cattle – Thebillion dollar question .Parasitology 43 ,133–142. 11. Dubey. J.P. A.L. Hattel and D.S. Lindsay. 1988. "Topper, Neonatal Neospora caninum infection in dogs: isolation of the causative agent and experimental transmission."J Am Vet Med Assoc., 193: 1259–1263 12. .Soltani. M.. A. Sadrebazzaz. M. Nasiri and M. Tahmoorespour. 2013. Cloning, Nucleotide Sequencing and Bioinformatics Study of NcSRS2 Gene, an Immunogen from Iranian Isolate of Neospora caninum. Iran J Parasitol. 8(1): 114–127. 13. Trees. A.J. and D.J.L. Williams .2005. "Endogenous and exogenous transplacental infection in Neospora caninum and Toxoplasma gondii."Trends. Parasitol., 21(12):558-561. 14. Khordadmehr. M. M. Namavari. A.K. Tafti. M. Mansourian. A. Rahimian. and Y. Daneshbod . 2013. Comparison of use of Vero cell line and suspension culture of murine macrophage to attenuation of virulence of Neospora caninum .Research in Veterinary Science 95, 515–521. 15. Barr. B.C.. P.A.Conrad. K.W. Sverlow. A.F.Tarantal and A.G. Hendrickx. 1994. "Experimental fetal and transplacental Neospora infection in the nonhuman primate."Lab Invest, 71:236–42. 16. Staubli. D. S. Nunez. H. Sager. G. Schares. and B. Gottstein. 2006. Neospora caninum immunoblotting improves serodiagnosis of bovine neosporosis. Parasitol Res 99, 648-58. 17. Abdeyazdan. A. and M.M. Namavari. 2015. Effect of inactivated Neospora caninum tachyzoite vaccine on immune markers and transplacental transmission in pregnant BALB/c mice. Online Journal of Veterinary Research.19:689-697. 18. Dubey. J.P. G. Schares. and L.M. Ortega-Mora .2007. Epidemiology and control of neosporosis and Neospora caninum. Cliical Microbiology Revew,20:323-67. 19. Andrianarivo. A. G.. B. C. Barr. M. L. Anderson. J. D. Rowe. A. E. Packham. K.W. Sverlow. and P.A Conrad. 2001. Immune responses in pregnant cattle and bovine fetuses following 3. experimental infection with Neospora caninum. Parasitology Research. 87:817–825. 20. Omata H., R., Kamiya., Y. Kano, R. Kobayashi, A. Maeda. and Saito. 2006. Footpad reaction induced by Neospora caninum tachyzoite extract in infected BALB/c mice. Veterinary Parasitology, 139:102–108. 21. Almeria. S.. R. Araujo. W. Tuo. F. Lopez-Gatius. J.P. Dubey. and L.C. Gasbarre. 2010. Fet.al death in cows experimentally infected with Neospora caninum at 110 days of gestation. Vet Parasitol. 169, 304–311.
آمار
تعداد مشاهده مقاله: 410
تعداد دریافت فایل اصل مقاله: 370
سامانه مدیریت نشریات علمی. طراحی و پیاده سازی از سیناوب
