(2021). بررسی تداخل سیستم های ملانوکورتینی و هیستامینرژیک مرکزی بر اخذ غذای ناشی از لپتین در جوجه های تخمگذار. , 76(6), 1735-1744. doi: 10.22092/ari.2021.354188.1626
. "بررسی تداخل سیستم های ملانوکورتینی و هیستامینرژیک مرکزی بر اخذ غذای ناشی از لپتین در جوجه های تخمگذار". , 76, 6, 2021, 1735-1744. doi: 10.22092/ari.2021.354188.1626
(2021). 'بررسی تداخل سیستم های ملانوکورتینی و هیستامینرژیک مرکزی بر اخذ غذای ناشی از لپتین در جوجه های تخمگذار', , 76(6), pp. 1735-1744. doi: 10.22092/ari.2021.354188.1626
بررسی تداخل سیستم های ملانوکورتینی و هیستامینرژیک مرکزی بر اخذ غذای ناشی از لپتین در جوجه های تخمگذار. , 2021; 76(6): 1735-1744. doi: 10.22092/ari.2021.354188.1626

بررسی تداخل سیستم های ملانوکورتینی و هیستامینرژیک مرکزی بر اخذ غذای ناشی از لپتین در جوجه های تخمگذار

Archives of Razi Institute
Article 19, Volume 76, Issue 6, January and February 0, Pages 1735-1744    PDF (861.92 K)
Document Type: مقالات پژوهشی
DOI: 10.22092/ari.2021.354188.1626
Abstract
مطالعه حاضر به منظور بررسی تداخل سیستم های ملانوکورتینی و هیستامینرژیک مرکزی بر اخذ غذای ناشی از لپتین در جوجه های تخمگذار انجام شد. در آزمایش 1، جوجه‌ها، تزریقات داخل بطن مغزی (ICV) را به فرم زیر دریافت کردند: سالین، α-FMH (250 نانومول)، leptin (10 میکروگرم) و leptin + α-FMH را دریافت کردند. آزمایش 2 الی 8 مشابه آزمایش 1 بود به استثنا اینکه جوجه‌ها با Chlorpheniramine (آنتاگونیست گیرنده H1 هیستامینی، 300 نانومول)، famotidine (آنتاگونیست گیرنده H2 هیستامینی، 82 نانومول)، Thioperamide (آنتاگونیست گیرنده H3 هیستامینی، 300 نانومول)، SHU9119 (آنتاگونیست گیرنده های M3/M4 ملانوکورتینی 5/0 نانومول)، MCL0020 (آنتاگونیست گیرنده های M4 ملانوکورتینی 5/0 نانومول)، astressin-B (آنتاگونیست گیرنده‌های CRF1/ CRF2 30 میکروگرم) و astressin2-B (آنتاگونیست گیرنده‌های CRF2 30 میکروگرم) را بجای α-FMH دریافت کردند. سپس مصرف تجمعی غذا تا 120 دقیقه بعد از تزریق اندازه‌گیری شد. با توجه به نتایج بدست آمده، تزریق داخل بطنی مغزی لپتین (10 میکروگرم) موجب کاهش مصرف غذا در جوجه‌های تخمگذار شد (P≤0.05). تزریق توام لپتین +α-FMH یا لپتین + chlorpheniramine موجب مهار اثرات هیپوفاژیک ناشی از لپتین شد (P≤0.05). تزریق لپتین + thioperamide موجب تقویت کاهش اشتهای ناشی از لپتین شد (P≤0.05). تزریق توام SHU9119 + لپتین،MCL0020 + لپتین، لپتین + astressin-B و astressin2-B + لپتین موجب مهار اثرات هیپوفاژیک ناشی از لپتین شد (P≤0.05). نتایج نشان دهنده این بود که هیپوفاژی ناشی از لپتین در تقابل با سیستم‌های ملانوکورتینی و هیستامینرژیک در جوجه‌های تخمگذار است.
Keywords
سیستم ملانوکورتینی; هیستامین; لپتین; اخذ غذا; جوجه تخمگذار
Supplementary Files
References
  1. Zendehdel M, Hassanpour S, Movahedi N. Central and peripheral methylamine-induced hypophagia is mediated via nitric oxide and TAAR1 in neonatal layer-type chicken. Neurosci Lett. 2020;739:135408.
  2. Adeli A, Zendehdel M, Babapour V, Panahi N. Interaction between leptin and glutamatergic system on food intake regulation in neonatal chicken: role of NMDA and AMPA receptors. Int J Neurosci. 2020;130(7):713-21.
  3. Irving AJ, Harvey J. Leptin regulation of hippocampal synaptic function in health and disease. Philos Trans R Soc Lond B Biol Sci. 2014;369(1633):20130155.
  4. Doherty GH, Beccano-Kelly D, Yan SD, Gunn-Moore FJ, Harvey J. Leptin prevents hippocampal synaptic disruption and neuronal cell death induced by amyloid beta. Neurobiol Aging. 2013;34(1):226-37.
  5. Rafiei M, Taati M, Alavi S, Nayebzadeh H, Zendehdel M. Effects of intracerebroventricular injection of histamine and H1, H2 receptor antagonists on electrocardiographic parameters in broiler chickens. Iran J Vet Res. 2011;12(3):192-8.
  6. Rozov SV, Zant JC, Karlstedt K, Porkka-Heiskanen T, Panula P. Periodic properties of the histaminergic system of the mouse brain. Eur J Neurosci. 2014;39(2):218-28.
  7. Schneeberger M, Gomis R, Claret M. Hypothalamic and brainstem neuronal circuits controlling homeostatic energy balance. J Endocrinol. 2014;220(2):T25-46.
  8. Ahmadi F, Zendehdel M, Babapour V, Panahi N, Hassanpour S, Khodadadi M. Modulatory function of NMDA glutamate receptor on MC3/MC4 receptors agonist-induced hypophagia in neonatal meat-type chicken. Vet Res Commun. 2017;41(4):241-8.
  9. Zendehdel M, Khodadadi M, Vosoughi A, Mokhtarpouriani K, Baghbanzadeh A. beta2 adrenergic receptors and leptin interplay to decrease food intake in chicken. Br Poult Sci. 2020;61(2):156-63.
  10. Richards MP, Proszkowiec-Weglarz M. Mechanisms regulating feed intake, energy expenditure, and body weight in poultry. Poult Sci. 2007;86(7):1478-90.
  11. Michael NJ, Caron A, Lee CE, Castorena CM, Lee S, Zigman JM, et al. Melanocortin regulation of histaminergic neurons via perifornical lateral hypothalamic melanocortin 4 receptors. Mol Metab. 2020;35:100956.
  12. Gloy VL, Lutz TA, Langhans W, Geary N, Hillebrand JJ. Basal plasma levels of insulin, leptin, ghrelin, and amylin do not signal adiposity in rats recovering from forced overweight. Endocrinology. 2010;151(9):4280-8.
  13. Guo L, Munzberg H, Stuart RC, Nillni EA, Bjorbaek C. N-acetylation of hypothalamic alpha-melanocyte-stimulating hormone and regulation by leptin. Proc Natl Acad Sci U S A. 2004;101(32):11797-802.
  14. Olanrewaju H, Purswell J, Collier SD, Branton SL. Effects of Light Ingress through Ventilation Fan Apertures on Selected Blood Variables of Male Broilers. Int J Poult Sci. 2017;16:288-95.
  15. Blevins JE, Stanley BG, Reidelberger RD. DMSO as a vehicle for central injections: tests with feeding elicited by norepinephrine injected into the paraventricular nucleus. Pharmacol Biochem Behav. 2002;71(1):277-82.
  16. Qi W, Ding D, Salvi RJ. Cytotoxic effects of dimethyl sulphoxide (DMSO) on cochlear organotypic cultures. Hear Res. 2008;236(1-2):52-60.
  17. Davis JL, Masuoka DT, Gerbrandt LK, Cherkin A. Autoradiographic distribution of L-proline in chicks after intracerebral injection. Physiol Behav. 1979;22(4):693-5.
  18. Furuse M, Matsumoto M, Saito N, Sugahara K, Hasegawa S. The central corticotropin-releasing factor and glucagon-like peptide-1 in food intake of the neonatal chick. Eur J Pharmacol. 1997;339(2):211-3.
  19. Van Tienhoven A, Juhasz LP. The chicken telencephalon, diencephalon and mesencephalon in sterotaxic coordinates. J Comp Neurol. 1962;118:185-97.
  20. Jonaidi H, Noori Z. Neuropeptide Y-induced feeding is dependent on GABAA receptors in neonatal chicks. J Comp Physiol A Neuroethol Sens Neural Behav Physiol. 2012;198(11):827-32.
  21. Furuse M, Ando R, Bungo T, Ao R, Shimojo M, Masuda Y. Intracerebroventricular injection of orexins does not stimulate food intake in neonatal chicks. Br Poult Sci. 1999;40(5):698-700.
  22. Saito ES, Kaiya H, Tachibana T, Tomonaga S, Denbow DM, Kangawa K, et al. Inhibitory effect of ghrelin on food intake is mediated by the corticotropin-releasing factor system in neonatal chicks. Regul Pept. 2005;125(1-3):201-8.
  23. Ahmadi F, Zendehdel M, Babapour V, Panahi N. CRF1/CRF2 and MC3/MC4 Receptors Affect Glutamate- Induced Food Intake in Neonatal Meat-Type Chicken. Braz J Poult Sci. 2019;21.
  24. Zendehdel M, Lankarani Mohajer L, Hassanpour S. Central muscarinic receptor subtypes (M1 and M3) involved in carbacol-induced hypophagia in neonatal broiler chicken. Int J Neurosci. 2020;130(2):204-11.
  25. Morton GJ, Blevins JE, Kim F, Matsen M, Figlewicz DP. The action of leptin in the ventral tegmental area to decrease food intake is dependent on Jak-2 signaling. Am J Physiol Endocrinol Metab. 2009;297(1):202-10.
  26. Lamosová D, Mácajová M, Zeman M, Mózes S, Jezová D. Effect of in ovo leptin administration on the development of Japanese quail. Physiol Res. 2003;52(2):201-9.
  27. Hen G, Yosefi S, Ronin A, Einat P, Rosenblum CI, Denver RJ, et al. Monitoring leptin activity using the chicken leptin receptor. J Endocrinol. 2008;197(2):325-33.
  28. Wang D, Xu C, Wang T, Li H, Li Y, Ren J, et al. Discovery and functional characterization of leptin and its receptors in Japanese quail (Coturnix japonica). Gen Comp Endocrinol. 2016;225:1-12.
  29. Masaki T, Chiba S, Yasuda T, Tsubone T, Kakuma T, Shimomura I, et al. Peripheral, but not central, administration of adiponectin reduces visceral adiposity and upregulates the expression of uncoupling protein in agouti yellow (Ay/a) obese mice. Diabetes. 2003;52(9):2266-73.
  30. Toftegaard CL, Knigge U, Kjær A, Warberg J. The role of hypothalamic histamine in leptin-induced suppression of short-term food intake in fasted rats. Regul Pept. 2003;111(1):83-90.
  31. Satoh N, Ogawa Y, Katsuura G, Numata Y, Masuzaki H, Yoshimasa Y, et al. Satiety effect and sympathetic activation of leptin are mediated by hypothalamic melanocortin system. Neurosci Lett. 1998;249(2):107-10.
  32. Halaas JL, Boozer C, Blair-West J, Fidahusein N, Denton DA, Friedman JM. Physiological response to long-term peripheral and central leptin infusion in lean and obese mice. Proc Natl Acad Sci U S A. 1997;94(16):8878-83.
  1. Kenny PJ. Common cellular and molecular mechanisms in obesity and drug addiction. Nat Rev Neurosci. 2011;12(11):638-51.
  2. Dridi S, Swennen Q, Decuypere E, Buyse J. Mode of leptin action in chicken hypothalamus. Brain Res. 2005;1047(2):214-23.
  1. Morimoto I, Yamamoto S, Kai K, Fujihira T, Morita E, Eto S. Centrally administered murine-leptin stimulates the hypothalamus-pituitary- adrenal axis through arginine-vasopressin. Neuroendocrinology. 2000;71(6):366-74.
  2. Uehara Y, Shimizu H, Ohtani K, Sato N, Mori M. Hypothalamic corticotropin-releasing hormone is a mediator of the anorexigenic effect of leptin. Diabetes. 1998;47(6):890-3.
Statistics
Article View: 14,211
PDF Download: 385


counter
Journal management system. designed by sinaweb