- همه نشریات
- نشریات علمی سازمان تحقیقات، آموزش و ترویچ کشاورزی
- مجلات ترویجی سازمان تحقیقات، آموزش و ترویج کشاورزی
- سایر نشریات سازمان تحقیقات، آموزش و ترویج کشاورزی
- نشریات علمی انجمن ها
- علوم آب و خاک
- علوم اقتصاد و ترویج کشاورزی
- علوم جنگل, مرتع و آبخیزداری
- علوم دامی و شیلات
- علوم زراعی و باغی
- علوم گیاهپزشکی
- علوم مهندسی و مکانیزاسیون کشاورزی
- نشریات با زبان انگلیسی
- نشریات با زبان فارسی
- نشریات دانشگاه آزاد اسلامی
- نشریات علمی
پیوندهای مفید
اخبار و اعلانات
آمار
| تعداد نشریات | 283 |
| تعداد نشریات سازمان | 81 |
| تعداد شماره‌ها | 2,726 |
| تعداد مقالات | 31,042 |
| تعداد مشاهده مقاله | 28,080,867 |
| تعداد دریافت فایل اصل مقاله | 16,247,390 |
اثر پیش‌تیمارهای زیستی بر شاخص‌های جوانه‌زنی، رشدی و فیزیولوژیک گیاهچه شنبلیله (Trigonella foenum-graecum L.) تحت تنش شوری طبیعی | ||
| علوم و فناوری بذر ایران | ||
| دوره 11، شماره 1 - شماره پیاپی 25، خرداد 1401، صفحه 131-145 اصل مقاله (406.13 K) | ||
| نوع مقاله: مقاله پژوهشی | ||
| شناسه دیجیتال (DOI): 10.22092/ijsst.2021.355229.1400 | ||
| نویسندگان | ||
| سید مهدی موسوی1؛ حشمت امیدی* 2؛ سید اسماعیل موسوی1 | ||
| 1دانشگاه شاهد | ||
| 2دانشیار گروه زراعت و اصلاح نباتات، دانشکده علوم کشاورزی و مرکز تحقیقات گیاهان دارویی دانشگاه شاهد تهران | ||
| چکیده | ||
| به منظور بررسی تأثیر تیمارهای زیستی بر شاخص‌های جوانه‌زنی، رشدی وفیزیولوژیک گیاهچه شنبلیله تحت تنش شوری طبیعی آزمایشی به‌صورت فاکتوریل در قالب طرح کاملاً تصادفی با سه تکرار در آزمایشگاه بذر دانشکده کشاورزی دانشگاه شاهد تهران در سال 1397 اجرا گردید. فاکتورهای آزمایش شامل پیش‌تیمارهای زیستی در چهار سطح (کنترل، تلقیح با کود زیستی ازته ، تلقیح با کود زیستی فسفاته و تلقیح با تلفیقی از کودهای زیستی) و سطوح شوری طبیعی (نمک طبیعی دریاچه قم) در پنج سطح (صفر، 3 ، 6 ، 9 و 12 دسی‌زیمنس بر متر) بودند. نتایج نشان داد افزایش شوری باعث بیشتر شدن میانگین مدت زمان جوانه‌زنی شد و استفاده از تیمارهای کود زیستی فسفاته و تیمار تلفیقی منجر شد این شاخص در بالاترین سطح شوری نسبت به تیمار شاهد و در همان سطح شوری 22 درصد کاهش نشان دهد. شوری باعث کاهش ضریب جوانه‌زنی گردید و بیشترین میزان این شاخص (3/74) در شوری 3 دسی‌زیمنس بر متر تیمار تلفیقی به‌دست آمد که نسبت به تیمار شاهد و در همان سطح شوری 89 درصد افزایش نشان داد. شوری کلروفیل کل را کاهش داد و تیمار زیستی ازته موجب گردید میزان کلروفیل کل در شوری صفر نسبت به همان سطح شوری در تیمار شاهد 155 درصد افزایش پیدا کند. پروتئین‌های محلول با افزایش شوری افزایش یافت و تیمار تلفیقی این شاخص را در بالاترین سطح شوری نسبت به تیمار شاهد 12 درصد افزایش داد. استفاده از تیمارهای زیستی با بالا بردن تولید آنزیم‌های آنتی‌اکسیدانت باعث شد اثر شوری تعدیل و کاهش یابد. | ||
| کلیدواژه‌ها | ||
| آنتی اکسیدانت؛ پروتئین؛ طول گیاهچه؛ کلروفیل؛ کود زیستی | ||
| عنوان مقاله [English] | ||
| The effect of biological pre-treatments on germination, growth and physiological indices of Fenugreek (Trigonella foenum-graecum L.) seedling under natural salinity stress | ||
| نویسندگان [English] | ||
| mousavi seyyed mehdi1؛ Heshmat Omidi2؛ seyyed esmaeil mousavi1 | ||
| 1Shahed university | ||
| 2Associate Professor ,Agricultural College and Medicinal Plant Research Center, Shahed University, Tehran | ||
| چکیده [English] | ||
| To study of the effect of biological pre-treatments on germination and growth of Fenugreek (Trigonella foenum-graecum L.) seedling under natural salinity stress, a factorial experiment in a completely randomized design was conducted in three replications. Experimental treatments were biological pre-treated at four levels (control, inoculation with Azoto bio-fertilizer, inoculation with Phosphate bio-fertilizer, inoculation with both bio-fertilizers) and natural salinity (salt of Qom Lake) at five levels (zero, 3, 6, 9 and 12 dS/m).The results showed that increasing of salinity levels led to increasing of mean germination time and using of bio-fertilizer treatments and combination treatment caused this index show 22 percentages reduction at highest level of salinity compared to control treatment at same level of salinity. Salinity reduced the germination coefficient and the highest amount of this index (74.3) obtained at 3 dS/m level of salinity that compared to control treatment and at the same level of salinity showed 89 percentages increasing. Salinity reduced total chlorophyll and using of biological treatments caused amount of total chlorophyll at zero level of salinity show 155 percentages increasing compared to control treatment and at the same level of salinity. With increasing of salinity level increased soluble protein and combination treatment increased this index 12 percentages at the highest level of salinity compared to control. Under stress, plants face with oxidative stress and to confront of that use antioxidant enzymes. In this experiment, the using of biological treatments by raising of the production of antioxidant enzymes caused the reduction of salinity effects. | ||
| کلیدواژه‌ها [English] | ||
| Antioxidant, biofertilizer, Chlorophyll, plantlength, protein | ||
| مراجع | ||
|
Abdul- Baki, A., and J. D. Anderson. 1973. Vigor determination in Soybean seed by multiple criteria. Crop Sci. 13(6):630–633. Arnon, A. N. 1967. Method of extraction of chlorophyll in the plants. Agron. J. 23: 112-121. Ashraf, M., and P. Harris. 2004. Potential biochemical indicators of salinity tolerance in plants. Plant Sci. 166: 3–16. Ashraf, M., and Q. Ali. 2008. Relative membrane permeability and activities of some antioxidant enzymes as the key determinants of salt tolerance in canola (Brassica napus L.). Environ. Exp. Bot. 63: 266–273. Bashan, Y., G. Holguin, and L. De-Bashan. 2004. Azosprillum-plant relationship: physiological, molecular, agricultural, and environmental advances. Can. J. Microbiol. 50(8): 521-577. Bradford, M. M. 1976. A rapid and sensitive method for the quantitation of microgram quantites of protein utilizing the principles of protein dyebining. Anal. Biochem. 72:248-254. Chance, B., and A. C. Maehly. 1995. Assay of catalase and peroxidase. PP. 764-765 In S.P. Culuwic, and N.O. Kapland (Eds). Method in enzymology. Academic Press. Inc, New York. Costa, M., P. Civello, G. Chaves, and G. Martinez. 2005. Effect of ethephon and 6-benzylaminopurine on chlorophy II degrading enzymes and a peroxidaselinked chlorophy II bleaching during post-harvest senescence of broccoli (Brassica Oleraceae L.). Postharvest. Biol. Technol. 35: 191-199. Dakora, F. D. 2003. Defining new roles for plant and rhizobial molecules in sole and mixed plant cultures involving symbiotic legumes. New Phytol. 157: 39-49. Davoodifard, M., D. Habibi, and F. Davoodifard. 2012. Effects of salinity stress on membrane stability, chlorophyll Content and yield components of wheat inoculated with plant growth promoting bacteria and humic acid. Agron. Plant Breed. 8(2): 71- 86. (In Persian) De, R., and R. K. Kar. 1995. Seed germination and seedling growth of mung been (Vigna radiate) under water stress induced by PEG-6000. Seed Sci. Technol. 23: 301-308. Egamberdieva, D., and Z. Kucharova. 2009. Selection for root colonizing bacteria stimulating wheat growth in saline soils. Biol. Fertil. Soils. 45: 563-571. Ellis, R.H., and E. H. Roberts. 1981. The quantification of aging and survival in orthodox seeds. Seed Sci. Technol. 9: 373-409. Ghorbanpur, A., Y. Mami, M. Ashournezhad, F. Abri, and M. Amani. 2011. Effect of salinity and drought stress on germination of fenugreek. Afr. J. Agric. 6(24): 5529-5532. Hafeez, F., M. Safdar, A. Chaudry, and K. Malik. 2004. Rhizobial inoculation improves seedling emergence, nutrient uptake and growth of cotton. Aust. J. Exp. Agric. 44: 617-622. Han, H., and K. Lee, 2006. Effect of inoculate on with phosphate and potassium co-in solubilizing bacteria on mineral uptake and growth of pepper and cucumber. Plant. Soil. Environ. 52: 130-136. Hecl, J., and A. Sustrikova. 2006. Determination of heavy metals in chamomile flower drug-an assurance of quality control. Program and Abstract book of the 1st International Symposium on Chamomile Research, Development and Production. 7-10 June, Presov, Slovak Republic. Khomri, A., A. Sarani, and M. Dahmardeh. 2007. The effect of salt stress on germination seed and growth seedling in six medicinal plants. Iranian. J. Med. Aromat. Plants. 23(3): 331-339. ISTA, 2010. International rules for seed testing. Supp. Seed Sci. Technol. 21: 1-288. Krishna, A., C.R. Patil, S. M. Raghavendra, and M. D. Jakati. 2008. Effect of bio-fertilizers on seed germination and seedling quality of medicinal plants. Karnataka. J. Agric. Sci. 21(6): 588-590. Makar, T. K., O. Turan, and Y. Ekmekcd. 2009. Effects of water deficit induced by PEG and NaCl on chickpea (Cicer arietinum L.) cultivars and lines at early seedling stages. Gazi University. J. Sci.22 (1): 5-14. Mehrafarin, A., S. H. Rezazadeh, H. Naghdi Badi, Gh. Noormohammadi, E. Zand, and A. Qaderi. 2011. A Review on Biology. Cultivation and Biotechnology of Fenugreek (Trigonella foenum-graecum L.) as a Valuable Medicinal Plant and Multipurpose. J. Med. plants. 10(37): 1-19. Mohammadkhani, N., and R. Heidari. 2007. Effects of drought stress on protective enzyme activities and lipid peroxidation in two maize cultivars. Pakistan. J. Biol. Sci. 10(21): 3835-3840 Motamednejad, M., S. V. Eslami, M.H. Sayari, and S. Mahmodi. 2016. Effect of enrichment with bio fertilizers and three micronutrients of iron, zinc and manganese on germination characteristics of ajowan plant (Carum copticum L.). J. Hortic. Sci. 29(4): 564-571. Mujeeb, U.R., U.A. Soomro, U.H. Mohammad Zadeh, and G. Shereen. 2008. World J. Agric. Sci. 4(3):398-403. Munns, R. 2002. Camparative physiology of salt and water stress. Plant. Cell. Environ. 25: 239-250. Nakano, Y., and K. Asada. 1981. Hydrogen peroxide is scavenged by ascorbate-specific peroxidase in spinach chloroplast. Plant Cell Physiol. 22: 867-880. Odoemena, C. S. 1988. Breaking of seed coat dormancy in a medicinal plant Tetrapleura tetraptera. J. Agric. Sci. 111(2): 393– 394. Parida, A.K., and A. B. Das. 2005. Salt tolerance and salinity effects on plants: a review. Ecotoxicol. Environ. Saf. 60: 324-349. Patanea, C., V. Cavallaroa, and S. Cosentinob. 2009. Germination and radicle growth in unprimed and primed seeds of sweet sorghum as affected by reduced water potential in NaCl at different temperatures in dustrial. Ind. Crops Prod. 30: 1-8. Ramamoorthy, K., N. Natarajan, and A. Lakshmanan. 2000. Seed biofortfication With Azospirillum spp. for improvement of seedling vigour and productivity in rice (Oryza sativa). Seed Sci. Technol. 28: 809- 815. Scotl, S. J., R. A. Jones, and W. A. Williams. 1984. Review of data analysis methods for seed germination. Crop Sci. 24(6):1192-1199. Taheri, S., T. Barzegar, and A. Zaeam zadeh. 2017. Effect of salicylic acid pre-treatment on cucumber and watermelon seeds germination under salinity stress. Iranian. J. Seed Sci. Res. 3(4): 15-27. Younesi, O., K. Poustini, M.R. Chaichiand, and A. A. Pourbabaie. 2012. Effect of Growth Promoting Rhizobacteria on germination and early growth of two alfalfa cultivars under salinity stress condition. J. Crop Improv. 14(2):83-96. Zahir, A. Z., M. Arshad, and W. F. Frankerberger. 2004. Plant growth promoting rhizobactria. Applications and perspectives in agriculture. Adv. Agron. 81: 97-168. Zhu, J.K. 2002. Salt and drought stress signal transduction in plants. Annu. Rev. Plant Biol. 153: 247-273. | ||
|
آمار تعداد مشاهده مقاله: 226 تعداد دریافت فایل اصل مقاله: 129 |
||
سامانه مدیریت نشریات علمی. قدرت گرفته از سیناوب