(2023). پایش روند رشد و تکثیر سویه واکسینال ویروس بیماری نیوکاسل در تخم‌مرغ‌های جنین‌دار به روش واکنش زنجیره‌ای پلیمراز رونویسی معکوس (RT-PCR). , 78(2), 767-773. doi: 10.22092/ari.2022.359142.2377
. "پایش روند رشد و تکثیر سویه واکسینال ویروس بیماری نیوکاسل در تخم‌مرغ‌های جنین‌دار به روش واکنش زنجیره‌ای پلیمراز رونویسی معکوس (RT-PCR)". , 78, 2, 2023, 767-773. doi: 10.22092/ari.2022.359142.2377
(2023). 'پایش روند رشد و تکثیر سویه واکسینال ویروس بیماری نیوکاسل در تخم‌مرغ‌های جنین‌دار به روش واکنش زنجیره‌ای پلیمراز رونویسی معکوس (RT-PCR)', , 78(2), pp. 767-773. doi: 10.22092/ari.2022.359142.2377
پایش روند رشد و تکثیر سویه واکسینال ویروس بیماری نیوکاسل در تخم‌مرغ‌های جنین‌دار به روش واکنش زنجیره‌ای پلیمراز رونویسی معکوس (RT-PCR). , 2023; 78(2): 767-773. doi: 10.22092/ari.2022.359142.2377

پایش روند رشد و تکثیر سویه واکسینال ویروس بیماری نیوکاسل در تخم‌مرغ‌های جنین‌دار به روش واکنش زنجیره‌ای پلیمراز رونویسی معکوس (RT-PCR)

Archives of Razi Institute
Article 34, Volume 78, Issue 2, January and February 0, Pages 767-773    PDF (406.56 K)
Document Type: مقالات پژوهشی
DOI: 10.22092/ari.2022.359142.2377
Abstract
دانش ما در مورد ویروس و کینتیک تکثیر آن نقش کلیدی در بهبود فرایند ساخت واکسن دارد. مطالعه حاضر با هدف پایش روند تکثیر و تعیین مناسب‌ترین زمان استحصال ویروس بیماری نیوکاسل (NDV) در مایعات آلانتوئیک تخم‌مرغ‌های جنین‌دار (ECEs) عاری از پاتوژن‌های خاص (SPF) با استفاده از روش‌های واکنش زنجیره‌ای پلیمراز رونویسی معکوس (RT-PCR)، هماگلوتیناسیون (HA) و دوز عفونت‌زایی 50 درصد تخم‌مرغ‌ها (EID50) طراحی گردید. به همین منظور، سویه واکسینال V4 ویروس نیوکاسل به‌صورت داخل آلانتوئیک به 96 تخم‌مرغ SPF جنین‌دار 10 روزه (هر کدام 1/0 میلی‌لیتر) تلقیح شد. مایعات آلانتوئیک گروه‌های 6 عددی از تخم‌مرغ‌ها در فواصل زمانی 6 ساعته و تا ساعت 96 بعد از عفونی‌شدن (hpi) جمع‌آوری شدند. محتوای ویروسی تعلیقه‌های استحصال‌شده با روش‌های مولکولی و سرولوژیک فوق‌الاشاره مورد بررسی قرارگرفتند. بر اساس نتایج، اولین زمان‌ شناسایی ویروس در تخم‌مرغ‌های جنین‌دار با روش RT-PCR ساعت‌ 36 بعد از عفونی‌شدن بود. عیارهای HA و EID50 مایعات آلانتوئیک از ساعت 42 بعد از عفونی‌شدن به حداکثر مقدار خود رسیده و تا پایان آزمایش در بالاترین سطح باقی‌ماندند. بر اساس یافته‌های این مطالعه، مناسب‌ترین زمان استحصال سویه V4 ویروس بیماری نیوکاسل در تخم‌مرغ-های جنین‌دار بین ساعات 60-42 بعد از عفونی‌شدن می‌باشد. داده‌های این پژوهش می‌تواند اطلاعات ما در مورد عوامل تاثیرگذار بر افزایش میزان تولید، باصرفه نمودن تولید و بهبود ایمنی‌زایی واکسن سویه V4 ویروس بیماری نیوکاسل را افزایش دهد.
Keywords
ویروس بیماری نیوکاسل; واکنش زنجیره‌ای پلیمراز رونویسی معکوس; تخم‌مرغ‌ جنین‌دار; واکسن
Supplementary Files
References
  1. Alexander DJ, Aldous EW, Fuller CM. The long view: a selective review of 40 years of Newcastle disease research. Avian Pathol. 2012;41(4):329-35.
  2. Miller P, Koch G. Newcastle disease. In: Swayne D, Glisson J, McDougald L, Nolan L, Suarez D, Nair V, editors. Diseases of poultry. 13th ed: Ames, IA: Wiley-Blackwell; 2013. p. 89-107.
  3. Mayo MA. A summary of taxonomic changes recently approved by ICTV. Arch Virol. 2002;147(8):1655-63.
  4. Kai Y, Hu Z, Xu H, Hu S, Zhu J, Hu J, et al. The M, F and HN genes of genotype VIId Newcastle disease virus are associated with the severe pathological changes in the spleen of chickens. Virol J. 2015;12:133.
  5. Rezaei Far A, Peighambari SM, Pourbakhsh SA, Ashtari A, Soltani M. Co-circulation of genetically distinct groups of avian paramyxovirus type 1 in pigeon Newcastle disease in Iran. Avian Pathol. 2017;46(1):36-43.
  6. Hosseini H, Langeroudi AG, Torabi R. Molecular characterization and phylogenetic study of Newcastle disease viruses isolated in Iran, 2010-2012. Avian Dis. 2014;58(3):373-6.
  7. Jansen T, Hofmans MP, Theelen MJ, Schijns VE. Structure-activity relations of water-in-oil vaccine formulations and induced antigen-specific antibody responses. Vaccine. 2005;23(8):1053-60.
  8. Alders RG. Making Newcastle disease vaccines available at village level. Vet Rec. 2014;174(20):502-3.
  9. OIE. Principles of veterinary vaccine production. In manual of diagnostic tests and vaccines for terrestrial animals Paris, France: World Organisation for Animal Health; 2021.
  10. Alazawy AK, Al Ajeeli KS. Isolation and molecular identification of wild Newcastle disease virus isolated from broiler farms of Diyala Province, Iraq. Vet World. 2020;13(1):33-9.
  11. lsahami AA, Ideris A, Omar A, Ramanoon SZ, Sadiq MB. Isolation, identification and molecular characterization of Newcastle disease viruses in vaccinated chickens from commercial farms in the Sultanate of Oman. Int J Vet Sci Med. 2018;6(2):248-52.
  12. Gohm DS, Thur B, Hofmann MA. Detection of Newcastle disease virus in organs and faeces of experimentally infected chickens using RT-PCR. Avian Pathol. 2000;29(2):143-52.
  13. Haque MH, Hossain M, Islam M, Zinnah M, Khan M, Islam M. Isolation and Detection of Newcastle disease virus from field outbreaks in Broiler and Layer chickens by Reverse transcription Polymerase chain reaction. Bangladesh J Vet Med. 2010;8(2):87-92.
  14. Singh K, Jindal N, Gupta S, Gupta A, Mittal D. Detection of Newcastle disease virus genome from the field outbreaks in poultry by reverse transcription-polymerase chain reaction. Int J Poult Sci. 2005;4(7):472-5.
  15. Farkas T, Antal M, Sami L, German P, Kecskemeti S, Kardos G, et al. Rapid and simultaneous detection of avian influenza and newcastle disease viruses by duplex polymerase chain reaction assay. Zoonoses Public Health. 2007;54(1):38-43.
  16. Gopinath VP, Raj GD, Raja A, Kumanan K, Elankumaran S. Rapid detection of Newcastle disease virus replication in embryonated chicken eggs using quantitative real time polymerase chain reaction. J Virol Methods. 2011;171(1):98-101.
  17. Wise MG, Suarez DL, Seal BS, Pedersen JC, Senne DA, King DJ, et al. Development of a real-time reverse-transcription PCR for detection of newcastle disease virus RNA in clinical samples. J Clin Microbiol. 2004;42(1):329-38.
  1. Pham HM, Nakajima C, Ohashi K, Onuma M. Loop-mediated isothermal amplification for rapid detection of Newcastle disease virus. J Clin Microbiol. 2005;43(4):1646-50.
  2. Kim LM, King DJ, Suarez DL, Wong CW, Afonso CL. Characterization of class I Newcastle disease virus isolates from Hong Kong live bird markets and detection using real-time reverse transcription-PCR. J Clin Microbiol. 2007;45(4):1310-4.
  3. Cardenas-Garcia S, Dunwoody RP, Marcano V, Diel DG, Williams RJ, Gogal RM, Jr., et al. Effects of Chicken Interferon Gamma on Newcastle Disease Virus Vaccine Immunogenicity. PLoS One. 2016;11(7):e0159153.
  4. Reed LJ, Muench H. A simple method of estimating fifty per cent endpoints12. Am J Epidemiol. 1938;27(3):493-7.
  5. Jestin V, Jestin A. Detection of Newcastle disease virus RNA in infected allantoic fluids by in vitro enzymatic amplification (PCR). Arch Virol. 1991;118(3-4):151-61.
  6. Kant A, Koch G, Van Roozelaar DJ, Balk F, Huurne AT. Differentiation of virulent and non-virulent strains of Newcastle disease virus within 24 hours by polymerase chain reaction. Avian Pathol. 1997;26(4):837-49.
  7. Kho CL, Mohd-Azmi ML, Arshad SS, Yusoff K. Performance of an RT-nested PCR ELISA for detection of Newcastle disease virus. J Virol Methods. 2000;86(1):71-83.
  8. Dharmayanti N, Hartawan R, Hewajuli D, Indriani R. Phylogenetic analysis of genotype VII of Newcastle disease virus in Indonesia. Afr J Microbiol Res. 2014;8(13):1368–74.
Statistics
Article View: 2,820
PDF Download: 348


counter
Journal management system. designed by sinaweb