(2023). برنامه کنترلی بروسلوز توسط سازمان دامپزشکی ایران در گاوداری های صنعتی شیری. , 78(3), 1107-1114. doi: 10.22092/ari.2022.360508.2586
. "برنامه کنترلی بروسلوز توسط سازمان دامپزشکی ایران در گاوداری های صنعتی شیری". , 78, 3, 2023, 1107-1114. doi: 10.22092/ari.2022.360508.2586
(2023). 'برنامه کنترلی بروسلوز توسط سازمان دامپزشکی ایران در گاوداری های صنعتی شیری', , 78(3), pp. 1107-1114. doi: 10.22092/ari.2022.360508.2586
برنامه کنترلی بروسلوز توسط سازمان دامپزشکی ایران در گاوداری های صنعتی شیری. , 2023; 78(3): 1107-1114. doi: 10.22092/ari.2022.360508.2586

برنامه کنترلی بروسلوز توسط سازمان دامپزشکی ایران در گاوداری های صنعتی شیری

Archives of Razi Institute
Article 41, Volume 78, Issue 3, January and February 0, Pages 1107-1114    PDF (499.77 K)
Document Type: مقالات پژوهشی
DOI: 10.22092/ari.2022.360508.2586
Abstract
بروسلوز یک عفونت مشترک بین انسان و دام است که مشکلات زیادی را در بهداشت عمومی در کشورهای در حال توسعه از جمله ایران ایجاد می کند. علی‌رغم تلاش‌های سازمان دامپزشکی ایران (IVO) برای کنترل بروسلوز، این بیماری همچنان در دام‌های اهلی شایع است. هدف از این مطالعه ارزیابی کارایی برنامه های کنترل و پیشگیری به کار گرفته توسط IVO در گله های آلوده بر روی روش های سرولوژیکی، کشت و مولکولی برای حذف بروسلا بود. برای این منظور، از مجموع 8750 راس گاو شیری واکسینه شده در دو مزرعه آلوده به بروسلا، نمونه خون جمع آوری شد. این مزارع با یک برنامه غربالگری برای بروسلا مثبت تشخیص داده شدند. سرم ها با استفاده از تست رز بنگال پلیت (RBPT) و تست رایت مورد ارزیابی قرار گرفتند. گاوهای شیری مثبت تحت نظارت IVO کشتار شدند. گاوهای باقیمانده هر 3 هفته یکبار مورد ارزیابی قرار گرفتند و حیوانات مثبت کشتار شدند. این روش تا زمانی ادامه یافت که حیوانات باقیمانده سه پاسخ منفی متوالی را در آزمایشات سرولوژی نشان دادند. غدد لنفاوی و شیر از 164 گاو سرم مثبت جمع آوری شد و جداسازی باکتریایی و تایید با روش مولکولی روی آن ها انجام شد. سویه های واکسن بروسلا ملیتنسیس بیووار 1 و RB51 به ترتیب از نمونه های شیر و غدد لنفاوی جداسازی شدند. ترشح بروسلا ملیتنسیس در شیر گاوهای واکسینه شده یک مشکل جدی است که منجر به گسترش بیشتر بروسلوز می شود. سیاست "تست و کشتار" در مزرعه گاوهای شیری آلوده، برای کنترل شیوع بروسلوز مهم ترین برنامه کنترلی است. برای گسترش کنترل نشده بروسلوز در ایران، کنترل موثر بروسلوز گاوی نیازمند ارزیابی سرولوژی برای شناسایی گله های آلوده، ریشه کنی مخازن آلودگی و واکسیناسیون تلیسه های جوان با RB51 است.
Keywords
بروسلوز; گاوشیری; واکسن RB51; بروسلا ملیتنسیس
Supplementary Files
References
  1. Wareth G, Melzer F, Elschner MC, Neubauer H, Roesler U. Detection of Brucella melitensis in bovine milk and milk products from apparently healthy animals in Egypt by real-time PCR. 2014.
  2. Megid J, Mathias LA, Robles CA. Clinical manifestations of brucellosis in domestic animals and humans. Bentham Open. 2010:1874-3188.
  3. Patel M, Patel P, Prajapati M, Kanani A, Tyagi K, Fulsoundar A. Prevalence and risk factor's analysis of bovine brucellosis in peri-urban areas under intensive system of production in Gujarat, India. Vet World. 2014;7(7).
  4. Olsen SC, Stoffregen W. Essential role of vaccines in brucellosis control and eradication programs for livestock. Expert Rev Vaccines. 2005;4(6):915-28.
  5. Dadar M, Tiwari R, Sharun K, Dhama K. Importance of brucellosis control programs of livestock on the improvement of one health. Vet Q. 2021;41(1):137-51.
  6. Zowghi E, Ebadi A. Typing of Brucella strains isolated in Iran. Arch Razi Inst. 1982;33(1):109-14.
  7. Martins H, Garin-Bastuji B, Lima F, Flor L, Fonseca AP, Boinas F. Eradication of bovine brucellosis in the Azores, Portugal—Outcome of a 5-year programme (2002–2007) based on test-and-slaughter and RB51 vaccination. Prev Vet Med. 2009;90(1-2):80-9.
  8. Dadar M, Alamian S, Behrozikhah AM, Yazdani F, Kalantari A, Etemadi A, et al. Molecular identification of Brucella species and biovars associated with animal and human infection in Iran. Vet Res Forum. 2019;10(4):315.
  9. Alton G, Jones L, Angus R, Verger J. Techniques for the Brucellosis laboratory. Paris: Institute National de la Recherdie Agrononique. 1988.
  10. Lopez-Goñi I, Garcia-Yoldi D, Marin C, De Miguel M, Munoz P, Blasco J, et al. Evaluation of a multiplex PCR assay (Bruce-ladder) for molecular typing of all Brucella species, including the vaccine strains. J Clin Microbiol. 2008;46(10):3484-7.
  11. Pascual DW, Yang X, Wang H, Goodwin Z, Hoffman C, Clapp B. Alternative strategies for vaccination to brucellosis. Microbes Infect. 2018;20(9-10):599-605.
  12. Bercovich Z, Haagsma J, ter Laak E. Use of delayed‐type hypersensitivity test to diagnose brucellosis in calves born to infected dams. Vet Q. 1990;12(4):231-7.
  13. Wareth G, Melzer F, Böttcher D, El-Diasty M, El-Beskawy M, Rasheed N, et al. Molecular typing of isolates obtained from aborted foetuses in Brucella-free Holstein dairy cattle herd after immunisation with Brucella abortus RB51 vaccine in Egypt. Acta Tropica. 2016;164:267-71.
  14. Nielsen K. Animal brucellosis: CRC press; 2018.
  15. Zamri-Saad M, Kamarudin M. Control of animal brucellosis: The Malaysian experience. Asian Pac J Trop Med. 2016;9(12):1136-40.
  16. Hosein H, Zaki HM, Safwat NM, Menshawy AM, Rouby S, Mahrous A, et al. Evaluation of the General Organization of Veterinary Services control program of animal brucellosis in Egypt: An outbreak investigation of brucellosis in buffalo. Vet World. 2018;11(6):748.
  17. Addis M. Public health and economic importance of brucellosis: A review. Public Health. 2015;5(7):68-84.
  18. Lapraik R, Moffat R. Latent bovine brucellosis. Vet Rec. 1982;111(25-26):578-9.
  19. Dadar M, Shahali Y, Fakhri Y. Brucellosis in Iranian livestock: A meta-epidemiological study. Microb Pathog. 2021;155:104921.
  20. Vemulapalli R, Contreras A, Sanakkayala N, Sriranganathan N, Boyle SM, Schurig GG. Enhanced efficacy of recombinant Brucella abortus RB51 vaccines against B. melitensis infection in mice. Vet Microbiol. 2004;102(3-4):237-45.
  21. Álvarez J, Sáez JL, García N, Serrat C, Pérez-Sancho M, González S, et al. Management of an outbreak of brucellosis due to B. melitensis in dairy cattle in Spain. Res Vet Sci. 2011;90(2):208-11.
  22. Bercovich Z. Maintenance of Brucella abortus‐free herds: a review with emphasis on the epidemiology and the problems in diagnosing brucellosis in areas of low prevalence. Vet Q. 1998;20(3):81-8.
  1. Zowghi E, Ebadi A. Naturally occurring Brucella melitensis infection in cattle in Iran. Rev Sci Tech Off Int Épizoot. 1985;4(4):811-4.
  2. Maadi H, Moharamnejad M, Haghi M. Prevalence of brucellosis in cattle in Urmia, Iran. Pak Vet J. 2011;31(1):81-2.
  1. Godfroid J, Nielsen K, Saegerman C. Diagnosis of brucellosis in livestock and wildlife. Croat Med J. 2010;51(4):296-305.
Statistics
Article View: 2,075
PDF Download: 268


counter
Journal management system. designed by sinaweb