(2023). استفاده از کرم های ایزینیا فتیدا درتولید پپتون به منظور تولید واکسن کلستریدیوم پرفرنجنس. , 78(3), 1041-1047. doi: 10.22092/ari.2023.361078.2627
. "استفاده از کرم های ایزینیا فتیدا درتولید پپتون به منظور تولید واکسن کلستریدیوم پرفرنجنس". , 78, 3, 2023, 1041-1047. doi: 10.22092/ari.2023.361078.2627
(2023). 'استفاده از کرم های ایزینیا فتیدا درتولید پپتون به منظور تولید واکسن کلستریدیوم پرفرنجنس', , 78(3), pp. 1041-1047. doi: 10.22092/ari.2023.361078.2627
استفاده از کرم های ایزینیا فتیدا درتولید پپتون به منظور تولید واکسن کلستریدیوم پرفرنجنس. , 2023; 78(3): 1041-1047. doi: 10.22092/ari.2023.361078.2627

استفاده از کرم های ایزینیا فتیدا درتولید پپتون به منظور تولید واکسن کلستریدیوم پرفرنجنس

Archives of Razi Institute
Article 33, Volume 78, Issue 3, January and February 0, Pages 1041-1047    PDF (504.16 K)
Document Type: مقالات پژوهشی
DOI: 10.22092/ari.2023.361078.2627
Abstract
با افزایش جمعیت انسان بر روی زمین، بیش از هر زمان دیگری نیاز به تامین انرژی و سلامت ضروری است و استفاده از منابع مختلف تامین انرژی در حال توسعه است. دیدگاه کلی جهانی در این زمینه تامین پروتئین و انرژی از منابع موجود و ارزان است. ایران نیز از این قاعده کلی مستثنی نیست و تنها در زمینه تامین سلامت منابع دامی، سالانه حدود 1۰ تن پپتون برای تولید واکسن های کلستریدیایی مورد نیاز است. کرم های ورمی کمپوست( ایزینیا فتیدا ) با درصد پروتئین بالا و تولید مثل سریع منبع مناسبی برای تولید پپتون هستند. بر این اساس سویه واکسنی از کلستریدیوم پرفرنجنس در دو محیط مختلف واجد پپتون تولید شده از کرم و پپتون گوشت کشت داده شد. سرعت رشد و اثرات توکسین اپسیلون و آلفا از محیط پپتون کرم با پپتون گوشت مقایسه گردید. نتایج نشان داد که سرعت رشد باکتری در محیط کشت پپتون کرم در 48 ساعت ۲۲ درصد بیشتر از پپتون گوشت بود. همچنین فعالیت توکسین آلفا( فسفوریلاز C) درطی 80 دقیقه حدود ۱۵ درصد در پپتون کرم، بیشتر از پپتون گوشت ثبت شد. در مورد قدرت کشندگی توکسین اپسیلون، هر سه موش گروه پپتون کرم از بین رفتند در حالیکه در گروه پپتون گوشت هر سه موش حتی بعد از ۷۲ ساعت نمردند. میانگین زمان بقای موش‌های تزریق شده با توکسین 1700 دقیقه بود. بنابراین گمان ما اینست که پروتئین کرم از گوشت صنعتی برای تولید پپتون در مقاصد واکسن سازی مناسبتر است. پیشنهاد می شود برای رفع نیاز به پروتئین هیدرولیز شده در تولید واکسن در آینده، زمینه های اشتغال و توسعه مزارع کود و کرم در ایران افزایش یابد.
Keywords
پپتون; کلستریدیوم پرفرنجنس; کرم ایزینیا فتیدا; فسفولیپاز; توکسین اپسیلون
Supplementary Files
References
  1. Medina A, Cova J, Vielma R, Pujic P, Carlos M, Torres JV. Immunological and chemical analysis of proteins from Eisenia foetida earthworm. Food Agric Immunol. 2003;15(3-4):255-63.
  2. Pasupuleti VK, Braun S. State of the art manufacturing of protein hydrolysates. Protein Hydrolysates Biotechnol. 2008:11-32.
  3. Mustățea G, Ungureanu EL, Iorga E. Protein acidic hydrolysis for amino acids analysis in food-progress over time: a short review. Ile. 2019;1:131.2.
  4. Hou Y, Wu Z, Dai Z, Wang G, Wu G. Protein hydrolysates in animal nutrition: Industrial production, bioactive peptides, and functional significance. J Anim Sci Biotechnol. 2017;8(1):1-13.
  5. Águila Juárez PD, Lugo de la Fuente J, Vaca Paulín R. Vermicomposting as a process to stabilize organic waste and sewage sludge as an apllication for soil. Trop Subtrop Agroecosystems. 2011;14(3):949-63.
  6. Cock LS, Guerrero CAR, Restrepo MAR. The use of earthworm flour for lactic acid biomass production. Afr J Biotechnol. 2013;12(40).
  7. Taheri A, Anvar S, Ahari H, Fogliano V. Comparison the functional properties of protein hydrolysates from poultry by-products and rainbow trout (Onchorhynchus mykiss) viscera. Iran J Fish Sci. 2013;12(1):154-69.
  8. Noruzy Mogadam H, Banaei A. Production of hydrolyzed protein from vermicompost worms Eisenia foetida for use in vaccine production process. Vet Res Biol Prod. 2022;35(2):88-94.
  9. Duracova M, Klimentova J, Myslivcova Fucikova A, Zidkova L, Sheshko V, Rehulkova H, et al. Targeted mass spectrometry analysis of Clostridium perfringens toxins. Toxins. 2019;11(3):177.
  10. Hemmaty M. Effectiveness of Chitosan Nanoparticles in Development of Pentavalent Clostridial Toxoid Vaccine in Terms of Clinical Pathology Elements and Immunological Responses. Arch Razi Inst. 2020;75(3):385.
  11. Stiles BG, Barth G, Barth H, Popoff MR. Clostridium perfringens epsilon toxin: a malevolent molecule for animals and man? Toxins. 2013;5(11):2138-60.
  12. Hustá M, Ducatelle R, Van Immerseel F, Goossens E. A Rapid and Simple Assay Correlates In Vitro NetB Activity with Clostridium perfringens Pathogenicity in Chickens. Microorganisms. 2021;9(8):1708.
  13. Hayati M, Shamseddini M, Tahamtan Y, Sadeghzadeh S, Manavian M, Nikoo D. Isolation and Toxin Typing of Clostridium Perfringens From Sheep, Goats, and Cattle in Fars Province, Iran. Int J Enteric Pathog. 2020;8(3):89-93.
  14. Alves GG, de Ávila RAM, Chávez-Olórtegui CD, Lobato FCF. Clostridium perfringens epsilon toxin: the third most potent bacterial toxin known. Anaerobe. 2014;30:102-7.
  15. Popoff MR. Epsilon toxin: a fascinating pore‐forming toxin. FEBS J. 2011;278(23):4602-15.
  16. McDonel JL. Clostridium perfringens toxins (type a, b, c, d, e). Pharmacol The. 1980;10(3):617-55.
  17. Cavalcanti MT, Porto TS, Neto BB, Lima‐Filho JL, Porto AL, Pessoa Jr A. Purification of α‐toxin from Clostridium perfringens type A in PEG‐phosphate aqueous two‐phase systems: a factorial study. Journal of Chemical Technology & Biotechnology: International Research in Process, Environ Clean Technol. 2008;83(2):158-62.
  18. Hemmaty M, Navidmehr J, Afsharian M, Farhoodi M, Zibaee S. Improvement in the Growth and α-toxin Production of Clostridium septicum by Magnesium Sulfate. Arch Razi Inst. 2020;75(2):219.
  19. Emadi A, Pourbakhsh S, Fathi Najafi M, Jamshidian M, Amini K. Combined Molecular and Biochemical Identification of Alpha Toxin in Local Isolated Clostridium novyi from the Sheep Liver. Arch Razi Inst. 2022;77(5):1769-77.
  1. Ardehali M, Darakhshan H. Production and standardization of polyvalent Clostridium perfringens vaccine in Iran. Arch Razi Inst. 1977;29(1):45-54.
  2. Si W, Ni X, Gong J, Yu H, Tsao R, Han Y, et al. Antimicrobial activity of essential oils and structurally related synthetic food additives towards Clostridium perfringens. J Appl Microbiol. 2009;106(1):213-20.
  3. Fernandez-Miyakawa ME, Marcellino R, Uzal FA. Clostridium perfringens type A toxin production in 3 commonly used culture media. J Vet Diagn Invest. 2007;19(2):184-6.
  4. Gahadkchee HF. Preparation of pepton soya protein,using in vaccine media. Final Report Res Plan. 1997.
  5. Al-Bahri MB, AL-Naimi SA, Ahammed SH. The optimum conditions for production of soya peptone by acidic hydrolysis of soya proteins. ALKEJ. 2009;5(1):1-9.
  6. Grieshop CM, Kadzere CT, Clapper GM, Flickinger EA, Bauer LL, Frazier RL, et al. Chemical and nutritional characteristics of United States soybeans and soybean meals. J Agric Food Chem. 2003;51(26):7684-91.
Statistics
Article View: 1,988
PDF Download: 5,679


counter
Journal management system. designed by sinaweb