(2024). بررسی انگل های روده ای با تمرکز بر انگل های مشترک بین انسان و دام در مدفوع ماکیان سانان. , 79(2), 379-386. doi: 10.32592/ARI.2024.79.2.379
. "بررسی انگل های روده ای با تمرکز بر انگل های مشترک بین انسان و دام در مدفوع ماکیان سانان". , 79, 2, 2024, 379-386. doi: 10.32592/ARI.2024.79.2.379
(2024). 'بررسی انگل های روده ای با تمرکز بر انگل های مشترک بین انسان و دام در مدفوع ماکیان سانان', , 79(2), pp. 379-386. doi: 10.32592/ARI.2024.79.2.379
بررسی انگل های روده ای با تمرکز بر انگل های مشترک بین انسان و دام در مدفوع ماکیان سانان. , 2024; 79(2): 379-386. doi: 10.32592/ARI.2024.79.2.379

بررسی انگل های روده ای با تمرکز بر انگل های مشترک بین انسان و دام در مدفوع ماکیان سانان

Archives of Razi Institute
Article 19, Volume 79, Issue 2, January and February 0, Pages 379-386    PDF (554.69 K)
Document Type: مقالات پژوهشی
DOI: 10.32592/ARI.2024.79.2.379
Abstract
گالیفرم ها پراکندگی جهانی دارند و توسط انسان به عنوان حیوانات اهلی یا پرندگان شکار پرورش داده می شوند. جمعیت طیور جهان به دلیل تقاضای بالای مصرف کنندگان برای محصولات طیور در حال افزایش است. با توجه به رشد روزافزون پرورش گالیفرم ها، این مطالعه با هدف بررسی انگل های گوارشی در مدفوع برخی از گونه های گالیفرم انجام شد. در این مطالعه 100 نمونه مدفوع از هفت گونه مختلف گالیفرم شامل ماکیان، طاووس، کبک، قرقاول، بوقلمون، بلدرچین و مرغ گینه جمع آوری شد و برای شناسایی انگل های گوارشی، نمونه ها با استفاده از روش کلیتون لین اصلاح شده، روش های رنگ آمیزی Ziehl-Neelsen و Trichrome مورد ارزیابی قرار گرفتند.. از 100 پرنده نمونه برداری شده، 35 درصد پرندگان از نظر انگل های گوارشی مثبت بودند. 30 درصد پرندگان آلوده به گونه های آیمریا، 18 درصد پرندگان به نماتد و 5 درصد پرندگان آلوده به گونه های ژیاردیا بودند. بیشترین میزان آلودگی انگلی در گالیفورم ها مربوط به عفونت تک یاخته ها و بیشترین میزان آلودگی پرندگان عفونت تک یاخته ای مربوط به Eimeria (30%) بود. با توجه به اینکه بیشتر آلودگی های انگلی در پرندگان به ظاهر سالم مشاهده شده است، رعایت بهداشت و ضدعفونی منظم قفس و همچنین کاهش تراکم پرندگان در لانه توصیه می شود. با توجه به پتانسیل مشترک بین انسان و دام ژیاردیا و با توجه به آلودگی برخی از پرندگان به این انگل، این موضوع باید مورد توجه مسئولان بهداشت عمومی، بازارهای پرنده فروش، صاحبان و پرورش دهندگان این پرندگان قرار گیرد.
Keywords
گالی فرم ها; انگل های گوارشی; بیماری های مشترک بین انسان و دام; نمونه مدفوع
Supplementary Files
References
  1. Zhang ZW, Ding CQ, Ding P, Zheng GM. The current status and a conservation strategy for species of Galliformes in China. Biodivers Sci. 2003;11:414–21.
  2. Fuller RA, Garson PJ. Pheasants: status survey and conservation action plan. 2000‒2004. p:1‒23.
  3. Tully TN, Dorrestein GM, Jones AK. Avian Medicne, 2th edition, Buttrworth Heinemann. 2000;144-178.
  4. Frantovo D. Some parasitic nematodes (Nematoda) of birds (Aves) in Czech Republic. Actu Societatis Zoologicae Bohemicae, 2000;66:13-28.
  5. Fatihu MY, Ogbogu VC, Njoku CO, Saror DI. Comparative studies of gastrointestinal helminthes of poultry in Zaria, Nigeria. Revue D’Elelevage et de Medecin Veterinaire des pays Troicaux. 1991;44:175-177.
  6. Card EL, Neshein R. Poultry Production. Lea and Febiger, Philadelphia. 1972;1893-1986.
  7. Bagust TJ. Improving health for poultry production in Asia: A development perspective. Avian Path. 1994;23:395-404.
  8. Permin A, H Magwisha AA, Kassuku P, Nansen M. Bisgaard F, Frandsn F, Gibb L. A cross- sectional study of helminth in rural scavenging poultry in Tanzania its relation to season and climate. J. Helminth. 1997;71:233-240.
  9. Morgenstern R, Lobsiger C. Health of laying hens in alternative systems in practice. In: Proceedings of the Fourth European Symposium on Poultry Welfare Edinburgh September. 1993;18-21. pp: 81-86.
  10. Dabirzadeh M, Baghaei M, Bokaeyan M, Goodarzei MR. Study of Cryptosporidium in children below five years of age with diarrhea in referring Ali-Asghar Pediatric Hospital of Zahedan. Journal of Gorgan University of Medical Sciences. 2003;5(1):54-59.
  11. Xiao L, Fayer R.. Molecular characterisation of species and genotypes of Cryptosporidium and Giardia and
    assessment of zoonotic transmission. International Journal of Parasitology. 2008;38(11):1239-55.
  12. Lujan HD, Svärd S. (Eds.). Giardia: A model organism. 2011.
  13. Doneley B. Avian medicine and surgery in practice: Companion and aviary birds, Second Edition. 2016;233-235.
  14. Lasek-Nesselquist E, Bogomolni AL, Gast RJ, Welch DM, Ellis JC, Sogin ML, Moore MJ.  Molecular characterization of Giardia intestinalis haplotypes in marine animals: variation and zoonotic potential. Diseases of Aquatic Organisms. 2008;19:81(1):39-51.
  15. Hanevik K, Wensaas KA, Rortveit G, Eide GE, Mørch K, Langeland N. Irritable bowel syndrome and chronic fatigue 6 years after giardia infection: a controlled prospective cohort study. Clinical Infectious Diseases. 2014;15;59(10):1394-400.
  16. Han M, Xiao S, An W, Sang C, Li H, Ma J, Yang M. Co-infection risk assessment of Giardia and Cryptosporidium with HIV considering synergistic effects and age sensitivity using disability-adjusted life years. Water Research. 2020;15:175:115698.
  17. Sandoval-Rodríguez A, Marcone D, Alegría-Morán R, Larraechea M, Yévenes K, Fredes F, Briceño C.  Cryptosporidium and Giardiaspp. in Free-Ranging Introduced Monk Parakeets from Santiago, Chile. Animals (Basel). 2021;12:11(3):801.
  18. Zajac AM, Conboy GA, Little SE, Reichard MV. Veterinary clinical parasitology. John Wiley & Sons. 2021.
  19. Papini R, Girivetto M, Marangi M, Mancianti F, Giangaspero A. Endoparasite infections in pet and zoo birds in Italy. ScientificWorldJournal. 2012;253127.
  20. Soulsby EJL. Arthropods and protozoa of domesticated animals 7th edition. Bailiere Tindal ELBS London. 1982;793.
  21. Conway DP, McKenzie ME. Poultry coccidiosis: diagnostic and testing procedures. John Wiley & Sons. 2007.
  22. Islam AWMS. Prevalence of helminth parasites of domestic fowls in Zambia. Poult. Adv. 1985;18:46-50.
  23. Rao JR, Sharma NN. Coccidiosis incoccidia quail in India. Indian J Anim Sci. 1992;62:51-52.
  24. Naveen KA, Arun CS. Diseases of quails, Poult. Adviser. 1992;25:43-48.
  25. Magwisha H, Kassuku A, Kyvsgaard N, Permin A. A comparison of the prevalence and burdens of helminth infections in growers and adult free-range chickens. Trop Anim Health Prod. 2002;34:205-214.
  26. Adam M, Bakare R, Ola-Fadunsin S, Akanbi O, Kigir E, Barka S. Pathological Changes of Fasciola Species Infection in Cattle Slaughtered in Ilorin Abattoir Kwara State, Nigeria. Iranian Journal of Veterinary Medicine. 2022;16(4): 356-363.
  27. Lawal J, Ezema K, Biu A, Adamu S. Detection of Gastrointestinal Parasites of Lizards (Agama agama) trapped in and around Commercial Poultry Pens in Gombe State, Nigeria. Iranian Journal of Veterinary Medicine. 2020;14(1): 1-12.
  28. David Ola-Fadunsin S, Bisola Abdulrauf A, Ganiyu I, Hussain K, Motunrayo Ambali H, Elelu N. The Intensity of Infection and Public Health Perception of Potentially Zoonotic Intestinal Parasites of Dogs in Kwara Central, Nigeria. Iranian Journal of Veterinary Medicine. 2023;17(2): 119-128.
  29. Firooz Jahantigh F, Rasekh M, Ganjali M, Sarani A. Seroprevalence of Toxoplasma Gondii Infection Among Pregnant Women and Small Ruminant Populations in Sistan Region, Iran. Iranian Journal of Veterinary Medicine. 2020;14(3): 239-249.
  30. Mehrabi F, Rassouli M, Emadi Chashmi SH. Molecular Detection of Toxoplasma gondii in Chicken Meats and Eggs in Semnan City, Iran. Iranian Journal of Veterinary Medicine. 2023;17(2): 167-172.
Statistics
Article View: 12,527
PDF Download: 690


counter
Journal management system. designed by sinaweb