| تعداد نشریات | 283 |
| تعداد نشریات سازمان | 81 |
| تعداد شماره‌ها | 2,766 |
| تعداد مقالات | 31,497 |
| تعداد مشاهده مقاله | 39,695,671 |
| تعداد دریافت فایل اصل مقاله | 17,251,789 |
تعیین زمان مناسب ارزیابی مقاومت ریشه های چغندرقند نسبت به پوسیدگی ریزوکتونیایی در شرایط میکروپلات بر اساس درجه روز رشد | ||
| چغندرقند | ||
| مقاله 6، دوره 39، شماره 1، شهریور 1402، صفحه 61-68 | ||
| نوع مقاله: کامل علمی - پژوهشی | ||
| شناسه دیجیتال (DOI): 10.22092/jsb.2024.364027.1336 | ||
| نویسندگان | ||
| حامد منصوری* 1؛ حمزه حمزه1؛ مهدی حسنی2 | ||
| 1استادیار بخش تحقیقات چغندرقند، مرکز تحقیقات و آموزش کشاورزی و منابع طبیعی استان همدان، سازمان تحقیقات، آموزش و ترویج کشاورزی، | ||
| 2استادیار موسسه تحقیقات اصلاح و تهیه بذر چغندرقند، سازمان تحقیقات، آموزش و ترویج کشاورزی، کرج، ایران. | ||
| چکیده | ||
| ارزیابی مقاومت لاین‌ها در شرایط آلودگی مصنوعی میکروپلات یکی از مؤثرترین روش‌ها برای دستیابی به لاین‌های مقاوم به بیماری است. به‌منظور تعیین زمان مناسب ارزیابی مقاومت لاین‌های چغندرقند نسبت به پوسیدگی ریزوکتونیایی، آزمایشی در شرایط آلودگی مصنوعی میکروپلات در سال 1401 در همدان اجرا شد. تیمارهای آزمایشی شامل شش زمان مختلف برداشت و ارزیابی ریشه‌ها شامل 12، 18، 22، 24، 26 و 29 روز پس از آلوده‌سازی در دو تکرار برای دو رقم حساس و مقاوم بود. در تمام تیمارها درجه روز رشد از زمان آلوده‌سازی تا زمان برداشت ثبت و در نهایت برای هر تیمار میزان درجه روز رشد در این فاصله زمانی به دست آمد. در زمان برداشت، ریشه‌ها بر اساس مقیاس یک تا نه بیماری، ارزیابی شدند. دوره زمانی ارزیابی ریشه‌ها با استفاده از برازش منحنی بین درجه روز رشد دریافتی به عنوان متغیر x و درصد ریشه‌های آلوده ژنوتیپ حساس به‌عنوان متغیر y برای تعیین شروع دوره و از برازش منحنی بین درجه روز رشد دریافتی به‌عنوان متغیر x و شاخص بیماری ژنوتیپ مقاوم به‌عنوان متغیر y برای تعیین پایان دوره ارزیابی استفاده شد. نتایج آزمایش نشان داد که دوره زمانی مناسب ارزیابی مقاومت ریشه‌های چغندرقند نسبت به ریزوکتونیا از 483 درجه روز رشد تا 518 درجه روز رشد بعد از آلوده‌سازی است. | ||
| کلیدواژه‌ها | ||
| آلودگی مصنوعی؛ برازش منحنی؛ چغندرقند؛ درجه حرارت؛ شاخص بیماری | ||
| عنوان مقاله [English] | ||
| Determining the appropriate time for resistance evaluation of sugar beet roots to rhizoctonia rot based on growing degree day under micro-plot conditions | ||
| نویسندگان [English] | ||
| Hamed Mansouri1؛ Hamze Hamze1؛ mahdi hassani2 | ||
| 1Assistant professor of Sugar Beet Research Department, Hamedan Agricultural and Natural Resources Research and Education Center (AREEO), Hamedan, Iran. | ||
| 2Assistant Professor of Sugar Beet Seed Institute, Agricultural Research, Education and Extension Organization, Karaj, Iran | ||
| چکیده [English] | ||
| Evaluating the resistance of lines under artificial inoculation in micro-plot condition is one of the most effective methods to obtain disease-resistant lines. In order to determine the appropriate time to evaluate the resistance of sugar beet lines to rhizoctonia rot, an experiment was carried out in Hamedan in 2022 under artificial inoculation in micro-plot. The experimental treatments consisted of six different times of harvest and root evaluation including 12, 18, 22, 24, 26 and 29 days after inoculation with two replications for two susceptible and resistant genotypes. Growing degree days in all treatments was recorded from inoculation time until harvest, and finally the growth degree day was achieved for each treatment in this period. Roots were evaluated on a scale of 1-9 at the harvest. Root evaluation period was calculated by curve fitting between the growing degree days received as variable x and the percentage of rotted roots in susceptible genotype as variable y to determine the start of the evaluation period and using curve fitting between growing degree days received as variable x and the disease index of resistant genotype as variable y to determine the end of the evaluation period. Results of the experiment showed that the appropriate time to evaluate the resistance of sugar beet roots to rhizoctoneia is from 483 growing degree days to 518 growing degree days after inoculation. | ||
| کلیدواژه‌ها [English] | ||
| Artificial inoculation, Curve fitting, Disease index, Sugar beet, Temperature | ||
| مراجع | ||
|
Bolton MD, Panella L, Campbell L, Khan M. Temperature, moisture, and fungicide effects in managing Rhizoctonia root and crown rot of sugar beet. Phytopathology. 2010; 100:689-697. doi: 10.1094/PHYTO-100-7-0689. Buddemeyer J, Pfähler B, Peterson J, Märländer B. Genetic variation in susceptibility of maize to Rhizoctonia solani (AG 2-2IIIB) symptoms and damage under field conditions in Germany. Journal of Plant Diseases and Protection. 2004; 111:521-533. Buhre C, Kluth C, Bu¨rcky K, Marlander B, Varrelmann M. Integrated control of root and crown rot in sugar beet: combined effects of cultivar, crop rotation, and soil tillage. Plant Disease. 2009; 93 (2): 155–161. doi:10.1094/PDIS-93-2-0155. Buttner G, Pfähler B, Märländer B. Greenhouse and field techniques for testing sugar beet for resistance to Rhizoctonia root and crown rot. Plant Breeding. 2004; 123, 158-166. doi:10.1046/j.1439-0523.2003.00967.x. Harveson RM, Hanson LE, Hein GL. Compendium of beet diseases and pests. St. Paul: American Phytopathological Society Press. 2009; pp. 140. doi:10.1094/9780890546598. Kirk WW, Wharton PS, Schafer RL, Tumbalam P, Poindexter S, Guza C, Fogg R, Schlatter T, Stewart J, Hubbell L, Ruppal D. Optimizing fungicide timing for the control of Rhizoctonia crown and root rot of sugar beet using soil temperature and plant growth stages. Plant Disease. 2008; 92:1091-1098. doi:10.1094/PDIS-92-7-1091. Kluth C, Verrelmann M. Maize genotype susceptibility to Rhizoctonia solani and its effect on sugar beet crop rotations. Crop Protection. 2010; 29:230-238. doi:10.1016/j.cropro.2009.12.002 McGrath JM, Hanson LE, Panella L. Registration of SR98 sugar beet germplasm with resistances to rhizoctonia seedling and crown and root rot diseases. Journal of Plant Registrations. 2015; 9:227–231. doi:10.3198/jpr2013.08.0052crg. Panella L. Root rots. Genetics and Breeding of Sugar Beet. E. Biancardi LG. Campbell, GN. Skaracis, and M. de Biaggi, eds. Science Publishers, Enfield, NH. 2005; pp. 95-100. Smiley RW. Water and temperature parameters associated with winter wheat diseases caused by soil borne pathogens. Plant Disease. 2009; 93:73-80. doi:10.1094/PDIS-93-1-0073. Strausbaugh CA, Eujayl IA, Panella LW, Hanson LE. Virulence, distribution and diversity of Rhizoctonia solani from sugar beet in Idaho and Oregon. Canadian Journal of Plant Pathology. 2011; 33:210-226. doi:10.1080/07060661.2011.558523. Windels CE, Brantner JR. Early-season application of azoxystrobin to sugar beet for control of Rhizoctonia solani AG 4 and AG 2-2. Journal of Sugar Beet Research. 2005; 42:1-17. doi:10.5274/jsbr.42.1.1. Windels CE, Kuznia RA, Call J. Characterization and pathogenicity of Thanatephorus cucumeris from sugar beet in Minnesota. Plant Disease. 1997; 81, 245-249. doi:10.1094/PDIS.1997.81.3.245. | ||
|
آمار تعداد مشاهده مقاله: 70 |
||