| تعداد نشریات | 285 |
| تعداد نشریات سازمان | 83 |
| تعداد شمارهها | 3,115 |
| تعداد مقالات | 34,688 |
| تعداد مشاهده مقاله | 49,905,413 |
| تعداد دریافت فایل اصل مقاله | 80,224,272 |
ناهمگونی شدت بیماری زایی استرینهای Ralstonia solanacearum جدا شده از مزارع سیبزمینی استان همدان. | ||
| مهار زیستی در گیاهپزشکی | ||
| دوره 11، شماره 1، شهریور 1402، صفحه 135-148 اصل مقاله (1.09 M) | ||
| نوع مقاله: مقاله پژوهشی | ||
| شناسه دیجیتال (DOI): 10.22092/bcpp.2024.365942.367 | ||
| نویسندگان | ||
| نگین طاهری1؛ غلام خداکرمیان* 2 | ||
| 1دانشجوی کارشناسی ارشد، گروه گیاهپزشکی، دانشکده کشاورزی، دانشگاه بوعلی سینا، همدان، ایران. | ||
| 2استاد، گروه گیاهپزشکی، دانشکده کشاورزی، دانشگاه بوعلی سینا، همدان، ایران. | ||
| چکیده | ||
| چکیده: بیماری پژمردگی باکتریایی سیبزمینی ناشی از Ralstonia solanacearum یکی از بیماریهای زیانبار در استان همدان است. تولید پلیساکارید خارج سلولی مهمترین عامل بیماریزایی این باکتری است. برای بررسی ناهمگونی شدت بیماریزایی استرینهای بیماریز، نمونههای گیاهی مشکوک به آلودگی از مناطق سیبزمینی کاری گردآوری شد. در آزمایشگاه از نمونههای آلوده استرینهای باکتری روی محیط کشت نوترینت آگار(NA) دارای تریفنیل تترازولیوم کلراید (TTC)جداسازی شد. غربالگری باکتریهای جدا شده بر پایه ظاهر کلنی، واکنش فوق حساسیت روی توتون و فعالیت تیروزینازی انجام شد و تعداد 63 استرین باکتریایی برگزیده و ویژگیهای فنوتیپی مهم آنها بررسی شد. برای برگزیدن نمایندههای استرینهای باکتریایی در پژوهش گلخانهای، واکنش فوق حساسیت روی توتون و بیماری زایی روی سیب زمینی و شمعدانی برای همه استرینها بررسی شد. سپس الگوی پروتئینهای محلول سلولی الکتروفورز شده استرینها در ژل پلی اکریل آمید بررسی شد. نتایج نشان داد که بیشتر استرینها روی توتون واکنش فوق حساسیت نشان داده و روی سیبزمینی و شمعدانی بیماری زا بودند و الگوی پروتئینی نسبتا یکسانی داشتند. در آزمایشی جداگانه استرینهای باکتریایی بر پایه شدت بیماری زایی روی برگ شمعدانی گروه بندی و داده های به دست آمده با نرم افزار SAS آنالیز شد. سرانجام بر پایه ویژگیهای ظاهری و فنوتیپی، الگوی پروتئین های محلول سلولی الکتروفورز شده، بیماری زایی در شمعدانی و واکنش فوق حساسیت روی توتون، تعداد 10 استرین نماینده برای بررسی ناهمگونی شدت بیماریزایی روی سیب زمینی و گوجه فرنگی در گلخانه برگزیده شدند. در شرایط گلخانه بیماریزایی استرینهای برگزیده روی سیب زمینی و گوجه فرنگی در قالب طرح بلوکهای کامل تصادفی با سه تکرار بررسی شد. نتایج نشان داد که استرین های به کار گرفته شده از نظر شدت بیماری زایی در هر دو گیاه سیب زمینی و گوجه فرنگی ناهمگون بوده و تفاوت معنیدار داشتند. استرینهای آزمایش شده بر پایه تاثیر روی ویژگیهای رشد مانند اپیناستی، وزن بوته، وزن تر و خشک اندام بالایی و ریشه در مواردی تا پنج گروه آماری بودند. این یافته مهم میتواند دیدگاه ما را در مورد مدیریت کنترل بیماری پژمردگی باکتریایی این دو محصول بسیار مهم بر پایه استفاده از ارقام مقاوم یا متحمل و کنترل تلفیقی روشن تر نموده و دریچه نوینی را به روی ما بگشاید و در کنترل کارآمد بیماری به ما کمک کند. | ||
| کلیدواژهها | ||
| واژه های کلیدی: اپی ناستی؛ R. solanacearum؛ پژمردگی باکتریایی سیبزمینی؛ پژمردگی باکتریایی گوجه فرنگی؛ شمعدانی | ||
| عنوان مقاله [English] | ||
| Heterogeneity of pathogenicity of Ralstonia solanacearum strains isolated from potato fields in Hamadan province | ||
| نویسندگان [English] | ||
| negin taheri1؛ Gholam Gholam Khodakaramian2 | ||
| 1M. Sc. student,, Department of Plant Protection, Faculty of Agriculture, Bu– Ali Sina University, Hamedan, Iran. | ||
| 2Professor, Department of Plant Protection, Faculty of Agriculture, Bu– Ali Sina University, Hamedan, Iran. | ||
| چکیده [English] | ||
| Abstract One of the most devastating potato diseases in Hamadan province is bacterial wilt caused by Ralstonia solanacearum. The production of extracellular polysaccharide is the most important pathogenic factor of this bacterium. To investigate the heterogeneity of pathogenicity among pathogenic strains of bacteria, plant samples suspected of contamination were collected from the potato growing areas of the province. In the laboratory, bacterial strains of R. solanacearum were isolated from infected potato samples on Nutrient Agar (NA) containing tri–phenyl tetrazolium chloride (TTC). Screening of isolated bacteria was done based on colony appearance on TTC culture medium, hypersensitivity reaction on tobacco & tyrosinase activity. A total of 63 bacterial strains were selected & their critical phenotype were characterized. To select representatives of bacterial strains for greenhouse experiment, hypersensitivity reaction on tobacco and pathogenicity on potato and geranium were investigated for all strains. The pattern of bacterial cell soluble proteins electrophoresed in polyacrylamide gel was investigated. Results showed that most of the strains showed hypersensitive reaction on tobacco & they were pathogenic on potato & geranium. In a separate experiment, bacterial strains were grouped based on the severity of pathogenicity on geranium leaves & the obtained data were analyzed with SAS software. Finally, based on the appearance & phenotypic characteristics of bacterial strains, the pattern of electrophoresed cell soluble proteins, pathogenicity in geranium & hypersensitivity reaction on tobacco, 10 representative strains were selected to investigate the heterogeneity of pathogenicity on potato and tomato in greenhouse. In greenhouse conditions, the variation of pathogenicity among the selected strains on potato & tomato was investigated in a randomized complete block design with three replicates. Results showed that the tested strains were heterogeneous in terms of pathogenicity in both potato & tomato plants and showed significant differences. In some cases, tested strains were up to five statistical groups based on the effect on plant growth factors such as epinasty, plant total weight, wet and dry weight of upper parts & roots. This important finding can clarify our point of view on the control of bacterial wilt disease of these two very important products based on the use of resistant or tolerant cultivars & integrated control and open a new window for us to efficient control of the disease. . | ||
| کلیدواژهها [English] | ||
| Key words: Epinasty, R. solanacearum bacterial wilt of tomato, bacterial wilt of potato, Geranium | ||
| مراجع | ||
|
Agrios, G.N. 2005. “Plant Phathology”. Elsevier Academic Prss, PP.922. Ahmed, N.N., Islam, M.R., Hossain, M.A., Meah, M.B. & Hossain, M.M. 2013. Determination of races and biovars of Ralstonia solanacearum causing bacterial wilt disease of potato. Journal of Agricultural Science, 5(6): 86. Bahar, M. & Danesh, D. 2017. "Etiology of potato bacterial wilt in Iran". Plant Diseases, 24: 1–12. Fahy, P.C. & Hayward, A.C. 1983. Media & methods for isolation & diagnostic tests. In Klement, Z., Rudolph, K., Stands, D., C. (eds)."Methods in Phytobacteriology." Akademiai Kiado, Budapest, P. 20–28. Microbiology, 2: 131–141. Gutarra, L., Herrera, J., Fernandez, E., Kreuze, J. & Lindqvist–Kreuze, H. 2017. Diversity, pathogenicity and current occurrence of bacterial wilt bacterium Ralstonia solanacearum in Peru. Frontiers in Plant Science, 8: 1221. Hayward, A.C. & Hartman, G.L. 1991. Bacterial wilt the disease and its causative agent Pseudomonas solanacearum. Wallingford, UK: CAB International in Association with AVRDC. Hong, J.C., Norman, D.J., Reed, D.L., Momol, M.T. & Jones, J.B. 2012. Diversity among Ralstonia solanacearum strains isolated from the southeastern United States. Phytopathology, 102: 924–936. Horita, M. & Tsuchiya, K. 2000. “Genetic Diversity of Japanese Strains of Ralstonia solanacearum”. The American Phytopathological Society, 91(4): 399–407. Hosseinzadeh, S., Falahi Charkhabi, N., Rastgo, M. & Hosseinzadeh, A. 2014. "Plant Bacteriology" in Agricultural Education & Extension. Page 346. Huang, Q. & Allen, C. 1997. "An exo–poly–a–D–galacturonosidase, PehB, is requred for wild–type virulence of Ralstonia solanacearum". Journal of Bacteriology, 179: 7369–7378. Janse, J.D. 2012. Review on brown rot (Ralstonia solanacearum race 3, biovar 2, phylotype IIB) epidemiology and control in the Netherlands since 1995: a success story of integrated pest management. Journal of Plant Pathology, 257–272. Kao, C.C. & Sequeira, L. 1991. "A gene cluster required for coordinated biosynthesis of lipopolysaccharide and extracellular polysaccharide also affects virulence of Pseudomonas solanacearum". Journal of Bacteriology, 173: 7841–7848. Klement, Z., Rudolph, K. & Sands, D.C. 1990. Methods in phytobacteriology. Akadémiai Kiadó. Khairy, A.M., Tohamy, M.R., Zayed, M.A. & Ali, M.A. 2021. Detecting pathogenic bacterial wilt disease of potato using biochemical markers and evaluate resistant in some cultivars. Saudi Journal of Biological Sciences, 28(9): 5193–5203. Kiba, A., Maimbo, M., Kanda, A., Tomiyama, H., Ohnishi, K. & Hikichi, Y. 2007. Isolation and expression analysis of candidate genes related to Ralstonia solanacearum–tobacco interaction. Plant Biotechnology, 24(4): 409–416. Li, Y., Feng, J., Liu, H., Wang, L., Hsiang, T., Li, X. & Huang, J. 2016. Genetic diversity & pathogenicity of Ralstonia solanacearum causing tobacco bacterial wilt in China. Plant Disease, 100(7): 1288–1296. Muthoni, J., Shimelis, H., Melis, R. & Kinyua, Z.M. 2014. Response of potato genotypes to bacterial wilt caused by Ralstonia solanacearum (Smith) (Yabuuchi et al.) in the tropical highlands. American Journal of Potato Research, 91(2): 215–232. Schaad, N.W., Jones, J.B. & Chun, W. 2001. "Laboratory Guide for Identification of Plant Pathogenic Bacteria". APS Press, St. Pual, Minnesota, 373 pp. Yabuuchi, E., Kosako, Y., Yano, I., Hotta, H. & Nishiuchi, Y. 1995. Transfer of two Burkholderia & an Alcaligenes species to Ralstonia gen. nov.: proposal of Ralstonia pickettii (Ralston, Palleroni and Doudoroff 1973) comb. nov., Ralstonia solanacearum (Smith 1896) comb. nov. and Ralstonia eutropha (Davis1969) comb. nov. Microbiology and Immunology, 39(11): 897–904. | ||
|
آمار تعداد مشاهده مقاله: 333 تعداد دریافت فایل اصل مقاله: 303 |
||