(2025). شیوع پنی باسیلوس لاروا، عامل بیماری لوک آمریکایی، در زنبورستان های ایران. , 80(2), 399-407. doi: 10.32592/ARI.2025.80.2.399
. "شیوع پنی باسیلوس لاروا، عامل بیماری لوک آمریکایی، در زنبورستان های ایران". , 80, 2, 2025, 399-407. doi: 10.32592/ARI.2025.80.2.399
(2025). 'شیوع پنی باسیلوس لاروا، عامل بیماری لوک آمریکایی، در زنبورستان های ایران', , 80(2), pp. 399-407. doi: 10.32592/ARI.2025.80.2.399
شیوع پنی باسیلوس لاروا، عامل بیماری لوک آمریکایی، در زنبورستان های ایران. , 2025; 80(2): 399-407. doi: 10.32592/ARI.2025.80.2.399

شیوع پنی باسیلوس لاروا، عامل بیماری لوک آمریکایی، در زنبورستان های ایران

Archives of Razi Institute
Article 14, Volume 80, Issue 2, January and February 0, Pages 399-407    PDF (408.07 K)
Document Type: مقالات پژوهشی
DOI: 10.32592/ARI.2025.80.2.399
Abstract
زنبورهای عسل یکی از حیاتی‌ترین گرده افشان‌ها هستند که به طور قابل توجهی در رشد گل‌ها و گیاهان وحشی در اکوسیستم‌ها نقش دارند. مطالعات اپیدمیولوژیک گسترده‌ای برای شناسایی و کاهش بیماری های باکتریایی، قارچی و ویروسی موثر بر این حشرات انجام شده است. یکی از بیماری‌های باکتریایی بسیار شدید و مسری، لوک آمریکایی است که بر لارو زنبور عسل تأثیر می‌گذارد که ناشی از یک باکتری گرم مثبت به نام لارو پنی‌باسیلوس است. این باکتری می‌تواند اسپورهایی تولید کند که می‌توانند سال‌ها در شرایط محیطی مناسب زنده بمانند. اگر بیماری لوک آمریکایی به موقع تشخیص داده نشود می تواند کل کندو را آلوده کند و به‌طور بالقوه به کندوهای مجاور سرایت کند. هدف از این تحقیق بررسی شیوع بیماری لوک آمریکایی در زنبورستان‌های کشور بود. این مطالعه شامل نمونه برداری از زنبورهای بالغ و عسل از 266 زنبورستان در سراسر کشور بود. همه نمونه‌ها با استفاده از پروتکل‌های استاندارد تهیه و استخراج DNA انجام شد. دو مجموعه از پرایمرهای اختصاصی برای شناسایی پنی‌باسیلوس لاروا با استفاده از روش‌های PCR و Nested-PCR استفاده شد. نمونه‌های PCR مثبت منتخب متعاقباً توالی‌یابی شدند و درخت فیلوژنتیک ساخته شد. بر اساس یافته‌ها، از بین 266 نمونه زنبور عسل تنها 14 نمونه (26/5%) و از بین 266 نمونه عسل 42 نمونه (78/15%) مثبت بودند. از بین 31 استان مورد بررسی، آلودگی به پنی‌باسیلوس لاروا در 18 استان (61 درصد) شناسایی شد. بیشترین میزان بروز بیماری لوک اآمریکایی در استان‌های شمالی (78/28 درصد) و مناطق مرکزی کشور (35/25 درصد) مشاهده شد. در مقابل، استان‌های شرقی کمترین میزان آلودگی (5.71 درصد) را نشان دادند که از نظر آماری معنی‌دار بود. اکثر نمونه‌های زنبور عسل مثبت از استان‌های مرکزی و نمونه‌های عسل عمدتاً از استان‌های شمالی بودند. نتایج این مطالعه نشان می‌دهد که پنی‌باسیلوس لاروا باکتری شایع در زنبورستان‌های سراسر ایران است.
Keywords
لوک آمریکایی; پنی باسیلوس لاروا; عسل; پی سی آر آشیانه ای; آنالیز فیلوژنی
Supplementary Files
References
  1. Morrissey BJ, Helgason T, Poppinga L, Fünfhaus A, Genersch E, Budge GE. Biogeography of Paenibacillus larvae, the causative agent of American foulbrood, using a new multilocus sequence typing scheme. Environ Microbiol. 2015; 17(4):1414-24.
  2. Pernal SF, Clay H. Honey bee diseases and pests. Canadian Association of Professional Apiculturists, Beaverlodge, AB. 2013: 68.
  3. Alippi A. Manual of Diagnostic Tests and Vaccines for Terrestrial Animals. Paris, France: World Organisation for Animal Health 2019. American foulbrood of honey bees (infection of honey bees with Paenibacillus larvae): pp. 719–35.
  4. Kyle B. When honey bees get sick: the most common diseases, pests, and parasites inside a hive. Presented at: Western Veterinary Conference; Las Vegas, NV. 2023;18-22.
  5. Rieg S, Bauer TM, Peyerl-Hoffmann G, Held J, Ritter W, Wagner D, et al. Paenibacillus larvae bacteremia in injection drug users. Emerg Infect Dis. 2010; 16(3):487–9.
  6. Ebeling J, Pieper F, Göbel J, Knispel H, McCarthy M, Goncalves M, Turner M, et al. Anti-Virulence Strategy against the Honey Bee Pathogenic Bacterium Paenibacillus larvaevia Small Molecule Inhibitors of the Bacterial Toxin Plx2A. Toxins (Basel). 2021; 13(9):607.
  7. Matović K, Žarković A, Debeljak Z, Vidanović D, Vasković N, Tešović B, Ćirić J. American Foulbrood—Old and Always New Challenge. Vet Sci. 2023;10(3):180.
  8. Modirrousta, H., Moharrami, M., Torkaman, M. Development of PCR method for diagnosing of honey bee American Foulbrood disease. Arch Razi Inst. 2012; 67: 1- 5.
  9. Govan VA, Allsopp MH, Davison S. A PCR detection method for rapid identification of Paenibacillus larvae. Appl Environ Microbiol. 1999; 65: 2243–5.
  10. Cochran WG. Sampling techniques (3rd ed.). New York: John Wiley & Sons 1977.
  11. Forsgren E, Stevanovic J, Fries I. Variability in germination and in temperature and storage resistance among Paenibacillus larvae Vet Microbiol. 2008;129:342–9
  12. Lauro FM, Favaretto M, Covolo L, Rassu M, Bertoloni G. Rapid detection of Paenibacillus larvae from honey and hive samples with a novel nested PCR protocol. Int J Food Microbiol. 2003; 81: 195–201.
  13. Piccini C, D'Alessandro B, Antunez K, Zunino P. Detection of Paenibacillus larvae Larvae spores in naturally infected bee larvae and artificially contaminated honey by PCR. World J Microb Biot. 2002; 18: 761- 5.
  14. Tamura K, Peterson D, Peterson N, Stecher G, Nei M, Kumar S. MEGA5: molecular evolutionary genetics analysis using maximum likelihood, evolutionary distance, and maximum parsimony methods. Mol Biol Evol. 2011; 28: 2731-9.
  15. Nei M, Kumar S. Molecular evolution and phylogenetics. Oxford University Press. 2000; 352
  16. Dobbelaere W, de Graaf DC, Peeters JE, Jacobs FJ. Development of a fast and reliable diagnostic method for American foulbrood disease (Paenibacillus larvae larvae) using a 16S rRNA gene based PCR. Apidologie. 2001; 32: 363–70.
  17. Steinkraus KH, Morse RA. American foulbrood incidence in some US and Canadian honeys, Apidologie. 1992; 23: 497-501.
  18. Hristov YV, Le Roux JJ, Allsopp MH, Wossler TC. Identity and distribution of American foulbrood (Paenibacillus larvae) in South Africa. J Apic Res. 2023; 62(2):303-10.
  19. Wilhelm E, Korschineck I, Sigmund M, Paulsen P, Hilbert F, Rossmanith W. Monitoring of Paenibacillus larvaein Lower Austria through DNA-Based Detection without De-Sporulation: 2018 to 2022. Vet Sci. 2023;10: 213.
  20. Moharrami M, Modirrosta H. Survey of contamination rate of Paenibacillus larvae larvae spores (the causative agent of American foulbrood) in the produced honeys in apiaries of Tehran province by culture and PCR. J Sci Technol. 2015;10:1-10.
  21. Nofouzi K, Razmaraii, N. Investigation of Paenibacillus larvae subspecies larva of honey bee (Apis mellifera) colonies in East Azerbaijan Province of Iran. Iran J Vet Med. 2015; 9(2): 87-91.
  22. Khezri M, Moharrami M, Modirrousta H, Torkaman M, Rokhzad B, Khanbabaie H. Prevalence of American foulbrood in asymptomatic apiaries of Kurdistan, Iran, Vet World. 2018; 11(3): 281-5.
  23. Yusefkhani M, Lotfi, A. Incidence of American foulbrood in honey bee colonies of Eastern Azerbaijan province, North West of Iran. Acad J Entomol. 2010; 3(1): 37-38.
  24. Moeinfar N, Modirrousta H, Moharrami M. Detection of Paenibacillus larvae larvae spores in honey and diseased larvae Samples by culture and PCR. Arch Razi Inst. 2011;66(2):101-7.
  25. Moharrami M, Mojgani N, Bagheri M, Toutiaee, S. Role of Honey Bee Gut Microbiota in the Control of American Foulbrood and European Foulbrood Diseases. Arch Razi Inst. 2022; 77(4): 1331-9.
Statistics
Article View: 478
PDF Download: 457


counter
Journal management system. designed by sinaweb