- همه نشریات
- نشریات علمی سازمان تحقیقات، آموزش و ترویچ کشاورزی
- مجلات ترویجی سازمان تحقیقات، آموزش و ترویج کشاورزی
- سایر نشریات سازمان تحقیقات، آموزش و ترویج کشاورزی
- نشریات علمی انجمن ها
- علوم آب و خاک
- علوم اقتصاد و ترویج کشاورزی
- علوم جنگل, مرتع و آبخیزداری
- علوم دامی و شیلات
- علوم زراعی و باغی
- علوم گیاهپزشکی
- علوم مهندسی و مکانیزاسیون کشاورزی
- نشریات با زبان انگلیسی
- نشریات با زبان فارسی
- نشریات دانشگاه آزاد اسلامی
- نشریات علمی
پیوندهای مفید
اخبار و اعلانات
آمار
| تعداد نشریات | 283 |
| تعداد نشریات سازمان | 81 |
| تعداد شماره‌ها | 2,729 |
| تعداد مقالات | 31,081 |
| تعداد مشاهده مقاله | 29,092,210 |
| تعداد دریافت فایل اصل مقاله | 16,340,441 |
بررسی اثر خرفه (Portulaca oleracea L.) در برابر نکروز کبدی القاء شده توسط سولفات مس در موش‌های صحرایی | ||
| تحقیقات گیاهان دارویی و معطر ایران | ||
| مقاله 4، دوره 33، شماره 2 - شماره پیاپی 82، تیر 1396، صفحه 208-218 اصل مقاله (329.67 K) | ||
| نوع مقاله: مقاله پژوهشی | ||
| شناسه دیجیتال (DOI): 10.22092/ijmapr.2017.106230.1765 | ||
| نویسندگان | ||
| آسیه امیری1؛ فرشته عزتی قادی* 2؛ عبدالله رمضانی قرا2؛ سعید رضایی زارچی3 | ||
| 1دانشجوی کارشناسی ارشد بیوفیزیک، دانشگاه پیام نور واحد تفت، ایران | ||
| 2استادیار، گروه زیست‌شناسی گیاهی، دانشکده علوم پایه، دانشگاه جیرفت، ایران | ||
| 3استادیار، گروه زیست‌شناسی، دانشکده علوم پایه، دانشگاه پیام نور واحد تفت، ایران | ||
| چکیده | ||
| هدف از این پژوهش، بررسی اثرات محافظتی خرفه (Portulaca oleracea L.) بر نکروز کبدی القاء شده توسط سولفات مس در موش‌های صحرایی بود. 28 سر موش‌های صحرایی با وزن تقریبی 180 تا 200 گرم به چهار گروه: گروه 1) کنترل نرمال، گروه 2) گروه مسموم (روزانه میزان 200 میلی‌گرم به‌ازای هر کیلوگرم وزن بدن سولفات مس)، گروه 3) خرفه (روزانه میزان 400 میلی‌گرم به‌ازای هر کیلوگرم وزن بدن عصاره گیاه خرفه به‌صورت گاواژ) و گروه 4) گروه مسموم و خرفه تقسیم شدند. طول دوره تیمار یک ماه و در پایان دوره سطوح آنزیم‌های آلانین آمینوترانسفراز (ALT) و آسپارتیت آمینوترانسفراز (AST) و آنتی‌اکسیدان‌های گلوتاتیون پراکسیداز (GPx)، کاتالاز (CAT)، سوپراکسید دسموتاز (SOD) و پراکسیداسیون چربی (LPO) در سرم بررسی شد. سولفات مس سطوح ALT، AST و LPO را به‌طور معنی‌دار افزایش، سطوح GPx، CAT و SOD را کاهش داد. در گروه مسموم و خرفه سطوح فاکتور‌های مذکور به‌صورت معنی‌دار و نزدیک به نرمال تغییر یافتند. نتایج هیستوپاتولوژیکی با یافته‌های بیوشیمیای مطابقت داشتند. عصاره خرفه، از طریق آنزیم‌های سم‌زدایی‌کننده و فاکتور‌های آنتی‌اکسیدانی و مهار رادیکال‌های آزاد سبب حفاظت کبدی می‌شود. | ||
| کلیدواژه‌ها | ||
| خرفه (Portulaca oleracea L.)؛ نکروز کبدی؛ سولفات مس؛ آنتی‌اکسیدان | ||
| عنوان مقاله [English] | ||
| Effects of purslane (Portulaca oleracea L.) on copper sulphate induced hepatic necrosis in rats | ||
| نویسندگان [English] | ||
| A. Amiri1؛ F. Ezzati Ghadi2؛ A. Ramezani Ghara2؛ S. Rezai Zarchi3 | ||
| 1MSc. Student, Payam-e-Noor University of Taft, Taft, Iran | ||
| 2Department of Plant Biology, Faculty of Sciences, University of Jiroft, Jiroft, Iran | ||
| 3Department of Biology, Faculty of Sciences, Payam-e-Noor University of Taft, Taft, Iran | ||
| چکیده [English] | ||
| The aim of this study was to evaluate the effects of purslane (Portulaca oleracea L.) on liver necrosis induced by copper sulfate in rats. Twenty-eight male rats were divided into four groups as follows: 1) Normal, 2) Toxicant control (CuSo4 was given orally (200 mg/kg b.w), 3) Purslane was given orally (400 mg/kg b.w) and 4) Toxicant + purslane. At the end of the four weeks, all the rats were sacrificed and some biochemical parameters of serum such as alanine aminotransferase (ALT), aspartate aminotransferase (AST) and concentrations of alondialdehyde (MDA), superoxide dismutase (SOD), catalase (CAT) and glutathione peroxidase (GPx) in serum were estimated. CuSo4 significantly increased the levels of ALT, AST, and MDA and decreased the levels of CAT, SOD, and GPx in toxicant rats. The toxicant + purslane group restored these changes to normal levels. Histopathological findings are consistent with biochemical findings. Purslane has a hepatoprotective effect on CuSo4-induced hepatic damage in rats and these effects might be contributed to modulation of detoxification enzymes and antioxidant and free radical scavenger effects. | ||
| کلیدواژه‌ها [English] | ||
| Purslane (Portulaca oleracea L.), Hepatic necrosis, COPPER SULPHATE, Antioxidant | ||
| مراجع | ||
|
- Ahmad, A., Pillai, K.K., Najmi, A.K. and Pal, S.N., 2002. Evaluation of hepatoprotective potential of Jigrine post-treatment against thioacetamide induced hepatic damage. Journal of Ethnopharmacology, 79(1): 35-41. - Alboghish, N. and Myahi, M., 2000. Bird’s Histopathology. Shadid Chamran University Press, Ahvaz, 187p. - Babaei, H., Kheirandish, R. and Ebrahimi, L., 2012. The effects of copper toxicity on histopathological and morphometrical changes of the rat testes. Asian Pacific Journal of Tropical Biomedicine, 2(3): 1615-1619. - Bakkali, F., Averbeck, S., Averbeck, D., Zhiri, A., Baudoux, D. and Idaomar, M., 2006. Antigenotoxic effects of three essential oils in diploid yeast (Saccharomyces cerevisiae) after treatments with UVC radiation, 8-MOP plus UVA and MMS. Mutation Research/Genetic Toxicology and Enviromental Mutagenesis, 606: 27-38. - Bonnefont-Rousselot, D., Bastard, J.P., Jaudon, M.C. and Delattre, J., 2000. Consequences of the diabetic status on the oxidant/antioxidant balance. Diabetes and Metabolism, 26(3): 163-176. - Bryszewska, M., Zavodnik, I.B., Niekurzak, A. and Szosland, K., 2005.Oxidative processes in red blood cells from normaland diabetic individuals. Biochemistry and Molecular Biology International, 37(2): 345-354. - Chance, B., Greenstein, D.S. and Roughton, R.J.W., 1952. The mechanism of catalase action. 1. Steady-stateanalysis. Archives of Biochemistry and Biophysics, 37(2): 301-321. - Choi, I., Kang, H.S., Yang, Y. and Pyun, K.H., 1994. IL-6 induces hepatic inflammation and collagen synthesis in vivo. Clinical and Experimental Immunology, 95: 530-535. - Drotman, R. and Lawhan, G., 1978. Serum enzymes are indications of chemical induced liver damage. Drug and Chemical Toxicology, 1(2): 163-171. - Esterbauer, H., Schaur, R.L. and Zollner, H., 1991. Chemistry and biochemistry of 4-hydroxynonenal, alondialdehyde and related aldehydes. Free radical Biology and Medicine, 11(1): 81-128. - Goyer, R.A., 1991. Toxic effect of metals: 652-661. In: Amdur, M.O., Doull, J. and Klassen, C.D., (Eds.). Casarett and Doull’s Toxicology, The Basic Science of Poisons. Permagon Press, New York, 1032p. - Hanan, A.A., Sobhy, M.H., Kawkab, A.A., Azza, K.A., Zeinab, A., Rahman, A. and Wedad, H., 2014. Chemical and remedial effects of purslane (Portulaca oleracea) plant. Life Science Journal, 11(6): 31-42. - Hayoz, D., Ziegler, T., Brunner, H.R. and Ruiz, J., 1998. Diabetes mellitus and vascular lesions. Metabolism, 47(12 Suppl 1): 16-19. - Iqbal, R., Malik, F., Aziz, T., Sarfraz, I., Ahmed, Z. and Shafqa, S., 2012. The study of histopathological changes upon exposure to vinegerized copper sulphate in liver and kidney of broiler chick. Middle-East Journal of Scientific Research, 12(1): 36-41. - Kumar, V., Kalita, J., Bora, H.K. and Misra, U.K., 2016. Relationship of antioxidant and oxidative stress markers in different organs following copper toxicity in a rat model. Toxicology and Applied Pharmacology, 11(293): 37-43. - Lenzen, S., Drinkgern, J. and Tiedge, M., 1996. Low antioxidant enzyme gene expression in pancreatic islets compared with various other mouse tissues. Free Radical Biology and Medicine, 20(3): 463-466. - Linder, M.C. and Hazegh-Azam, M., 1996. Copper biochemistry and molecular biology. The American Journal of Clinical Nutrition, 63: 797-811. -Luck, H., 1971. Catalase: 885-893. In: Bergmeyer, H.U., (Ed.). Methods of Enzymatic Analysis. Academic Press, New York, 1064p. - Masom, K.E., 1979. A conspectus of research on copper metabolism and requirement in man. The Journal of Nutrition, 109(11): 1979-2066. - Michael, J. and Fowler, M.D., 2007. Diabetes treatment, part 1: diet and exercise. Clinical Diabetes, 25(3): 105-109. - Naik, S.R., 2003. Antioxidants and their role in biological functions: an overview. Indian Drugs, 40(9): 501-512. - Nishikimi, M., Rao, N.A. and Yagi, K., 1972. The occurrence of superoxide anion in the reaction of reduced phenazinemethosulphate and molecular oxygen. Biochemical and Biophysical Research Communications, 46(2): 849-854. - Nosrati, N., Aghazadeh, S. and Yazdanparast, R., 2010. Effects of Teucrium polium on insulin resistance in nonalcoholic steatohepatitis. Journal of Acupunct Meridian Study, 3(2): 104-110. - Paglia, D.E. and Valentine, W.N., 1967. Studies on the quantitative and qualitative characterization of erythrocyte glutathione peroxidase. The Journal of Laboratory and Clinical Medicine, 70: 158-168. - Preston, B.L. and Snell, T.W., 2008. Full life-cycle toxicity assessment using rotifer resting egg production: Implications for ecological risk assessment. Environmental Pollution, 114(3): 399-406. - Reitman, S. and Frankel, A., 1957. Colorimetric method for the determination of serum glutami oxaloacetic and glutamic pyruvic trasaminases. American Journal of Clinical Pathology, 28: 26-63. - Sadi, G., Eryilmaz, N., Tütüncüoğlu, E., Cingir, Ş. and Güray, T., 2012. Changes in expression profiles of antioxidant enzymes in diabetic rat kidneys.Diabetes Metabolism Research and Review, 28(3): 228-235. - Satho, K., 1988. Serum lipid peroxidation in cerebral vascular disorder determined by a new colorimetric method. Clinica Chemical Acta, 90: 37-43. - Simopoulos, A., Norman, H.A., Gillaspy, J.E. and Duke, J.A., 1992. Common purslane: a source of omega-3 fatty acids and antioxidants. Journal of American College of Nutrition, 11(4): 374-382. - Sokol, R.J., Devereaux, M., Mierau, G.W., Hambidge, K.M. and Shikes, R.H., 1990. Oxidant injury to hepatic mitochondrial lipids in rats with dietary copper overload: modification by vitamin E deficiency. Gastroenterology, 99(4):1061-1071. - Yang, Z., Liu, C., Xiang, L. and Zheng, Y., 2009. Phenolic alkaloids as a new class of antioxidant inputulacaoleracea. Phytotherapy Research, 23(7): 1032-1035. - You Guo, C., Zongji, S. and Xiaoping, C., 2009. Evaluation of free radicals scavenging and immunity-modulataryoctivities of purslane polysaccharides. International Journal of Biological Macromolecules, 45(5): 445-452. | ||
|
آمار تعداد مشاهده مقاله: 704 تعداد دریافت فایل اصل مقاله: 488 |
||
سامانه مدیریت نشریات علمی. قدرت گرفته از سیناوب