| تعداد نشریات | 286 |
| تعداد نشریات سازمان | 84 |
| تعداد شماره‌ها | 3,026 |
| تعداد مقالات | 33,802 |
| تعداد مشاهده مقاله | 45,145,732 |
| تعداد دریافت فایل اصل مقاله | 56,376,314 |
بهینه سازی استخراج ترکیبات آنتی اکسیدانی و فنولی از جلبکLaurencia papillosa با روش مایکروویو | ||
| تحقیقات مهندسی صنایع غذایی | ||
| مقاله 5، دوره 21، شماره 1 - شماره پیاپی 72، مرداد 1401، صفحه 57-74 اصل مقاله (839.3 K) | ||
| نوع مقاله: مقاله پژوهشی | ||
| شناسه دیجیتال (DOI): 10.22092/fooder.2022.351679.1283 | ||
| نویسندگان | ||
| یاسمین فیاض1؛ مسعود هنرور* 2؛ نرگس مورکی3 | ||
| 1گروه علوم و مهندسی صنایع غذایی، واحد علوم و تحقیقات، دانشگاه آزاد اسلامی، تهران | ||
| 2گروه صنایع غذایی دانشکده علوم کشاورزی و صنایع غذایی واحد علوم و تحقیقات | ||
| 3گروه شیلات، دانشکده علوم و فنون دریایی، واحد تهران شمال، دانشگاه آزاد اسلامی، تهران | ||
| چکیده | ||
| گیاهان آبزی یکی از منابع مهم ترکیبات زیست فعال با خاصیت آنتی اکسیدانی محسوب می‌شوند. در تحقیق حاضر به بهینه سازی استخراج ترکیبات آنتی اکسیدانی شامل کلروفیل a و b، کاروتنوئید و ترکیبات فنلی از جلبک Laurencia papillosa با روش مایکروویو پرداخته شده است که براساس متغیرهای مستقل شامل زمان استخراج، توان مایکروویو، نوع حلال و نسبت حلال به نمونه است. برای طراحی آزمایش در این مطالعه از نرم افزار Design Expert با 25 اجرا استفاده و مقدار ترکیبات آنتی اکسیدانی جلبک اندازه گیری شد. نتایج حاصل از سنجش کلروفیل a و b حاکی از آن است که هیچ یک از چهار متغیر مستقل گفته‌شده اثر معنی‌داری(P>0.05) بر استخراج کلروفیل نداشته است. در مورد کاروتنوئید، فاکتورهای زمان، اثر متقابل زمان×حلال و اثر متقابل زمان×توان دارای اثر معنی‌دار (P>0.05)بوده‌اند و طبق نتایج به‌دست آمده شرایط بهینه استخراج کاروتنوئید شامل حلال متانول با نسبت 10.5 به 1، توان 156 وات و زمان 24.5 دقیقه بوده است. در زمینه ترکیبات فنلی، فاکتورهای حلال، زمان، اثر متقابل حلال×زمان و اثر متقابل حلال×توان دارای اثر معنی‌دار (P>0.05) بوده‌اند و حلال متانول با نسبت 12.5 به 1، توان 180 وات و زمان 10 دقیقه شرایط بهینه استخراج فنل را تشکیل داده‌اند. برابر داده‌های به‌دست‌آمده از این تحقیق، جلبک Laurencia papillosa خاصیت آنتی اکسیدانی قابل توجهی دارد و با کنترل پارامترهای اثرگذار در فرآیند استخراج با مایکروویو می‌توان به حداکثر میزان ترکیبات آنتی اکسیدانی دست یافت. | ||
| کلیدواژه‌ها | ||
| حلال؛ زیست فعال؛ کاروتنوئید؛ کلروفیل؛ گیاه آبزی | ||
| عنوان مقاله [English] | ||
| Extraction Optimization of Antioxidant and Phenolic Compounds of Laurencia papillosa by Microwave-Assisted Process | ||
| نویسندگان [English] | ||
| Yasamin Fayaz1؛ Nargess Moorki3؛ | ||
| 1Department of Food Science and Technology, Islamic Azad University, Science and Research Branch, Tehran, Iran | ||
| 3Department of Fisheries Science, college of Marine Science and Technology, Tehran North Branch, Islamic Azad University, Tehran, Iran | ||
| چکیده [English] | ||
| Aquatic plants are one of the most important sources of bioactive compounds with antioxidant activity. The aim of this paper is to optimize the microwave extraction of antioxidant compounds including chlorophyll a and b, carotenoids, and phenolic compounds from Laurencia papillosa based on extraction time, microwave power, solvent type, and solvent to sample ratio. Experimental design was performed using Design Expert with 25 runs, and the amounts of the mentioned antioxidant compounds were measured. The results for chlorophyll a and b showed that none of the extraction factors had a significant effect (P > 0.05) on these two types of chlorophylls. In relation to carotenoid extraction, the time, time and solvent interaction, and time and power interaction had significant effects (P 0.05), and according to the results, the optimum conditions for carotenoid extraction include methanol as the solvent with a ratio of 10.5 to 1, power of 156 watts, and time of 24.5 minutes. Regarding phenolic compounds, solvent, time, solvent and time interaction, and solvent and power interaction had significant effects (P 0.05), and the optimum conditions of phenol extraction include methanol as the solvent with a ratio of 12.5 to 1, power of 180 watts, and time of 10 minutes. The results of this paper indicate that Laurencia papillosa has significant antioxidant properties, and by controlling the effective parameters in the microwave extraction process, the maximum amount of antioxidant compounds can be obtained. | ||
| کلیدواژه‌ها [English] | ||
| Aquatic plant, Bioactive, Chlorophyll, Carotenoid, Solvent | ||
| مراجع | ||
|
Airanthi, M. K., Hosokawa, M. and Miyashita, K. 2011. Comparative antioxidant activity of edible japanese brown seaweeds. Journal of Food Science. 76 (1): 104-111. Amir Sharifi, M. 2015. Phytochemical study and antibacterial and antifungal and cytotoxic effects of Sargassum glaucescens algae. Ph.D. Thesis. Faculty of Marine Science and Technology Islamic Azad University, Science and Research Branch [In Persian]. Chew, Y. L., Lim, Y. Y., Omar, M. and Khoo, K. S. 2008. Antioxidant activity of three edible seaweeds from two areas in South East Asia. LWT Food Science and Technology. 41 (6): 1067–1072. Dominguez, H. 2013. Functional Ingredients from Algae for Foods and Nutraceuticals. Woodhead Publishing Series in Food Science, Technology and Nutrition, pp. 1-86. Esquivel-Hernández, D., López, V., Rodríguez-Rodríguez, J., Alemán-Nava, G., CuéllarBermúdez, S., Rostro-Alanis, M., and Parra-Saldívar, R. 2016. Supercritical carbon dioxide and microwave-assisted extraction of functional lipophilic compounds from Arthrospira platensis. International Journal of Molecular Sciences. 17(5): 658. Farasat, M., Khavari-Nejad, R., Nabavi, M.B. and Namjooyan, F. 2014. Antioxidant activity of methanolic extract of green seaweed Caulerpa sertularioides. farlowii. Journal of Marine Biology 5 (4): 13-20. [In Persian]. Gupta, S., Cox, S., Rajauria, G., Jaiswal, A.K. and Abu-Ghannam, N. 2012. Growth inhibition of common food spoilage and pathogenic microorganisms in the presence of brown seaweed extracts. Food and Bioprocess Technology. 5 (5): 1907–1916. Hashem Dabbaqian, E., Rezaei, M. and Tabarsa, M. 2016. Ethanolic extraction and solvent-solvent partitioning of antioxidant compounds from green seaweed Enteromorpha intestinalis. Iranian Journal of Natural Resources. 69 (3): 385-396 [In Persian]. Hassan Soltan, T., Noroozi, M. and Amoozegar, M. A. 2016. A survey on total carotenoids, chlorophyll a and b and also antioxidant activity of derived from four strain of green alga isolated from the Golestan coasts (Caspian Sea). New Cellular and Molecular Biotechnology Journal. 6 (24): 31-36. [In Persian]. Hwang, J. Y., Shue, Y. S. and Chang, H. M. 2001. Antioxidative activity of roasted and defatted peanut kernels. Food Research International. 34 (7): 639-647. Jung, Ch., Maeder, V., Funk, F., Frey, B., Sticher, H. and Frosserd, E. (2003). Release of phenols from Lupinus albus L. roots exposed to Cu and their possible role in Cu detoxification, Plant and Soil. 252 (2): 301-312. Kim, M. C., Dharaneedharan, S., Moon, Y.G., Kim, D.H., Son, H.J. and Heo, M.S. 2013. Isolation and Identification of Oceanisphaera Sp. JJM57 from Marine Red Algae Laurencia Sp. (Ceramiales: Rhodomelaceae). The Korean Journal of Microbiology. 49 (1): 58-63. Kumar Gupta, A. and Neelam, M. 2006. Hepatoprotective activity of aqueous ethanolic extract of chamomile capitula in paracetamol intoxicated albino rats. American Journal of Pharmacology and Toxicology. 1 (1): 17-20. Nuchter, M., Ondruschka, B., Bonrath, W. and Gum, A. 2004. Microwave assisted synthesis – a critical technology overview. Green Chemistry. 6 (3): 128-141. Omar, H., Al-Judaibiand, A. and El-Gendy, A. 2018. Antimicrobial antioxidant anticancer activity and phytochemical analysis of the red alga Laurencia papillosa. International Journal of Pharmacology. 14 (4): 572-583. O'Sullivan, A. M., O'Callaghan, Y., O'Grady, M. N., Queguineur, B., Hanniffy, D., Troy, D. J., Kerry, j. p. and O’Brien, N. M. 2011. In vitro and cellular antioxidant activities of seaweed extracts prepared from five brown seaweeds harvested in spring from the west coast of Ireland. Food Chemistry. 126 (3): 1064-1070. Roleda, M. Y., Lutz-Meindl, U.,Wiencke, C. and Lutz, C. 2010. Physiological biological and ultrastructural responses of the green macroalga Urospora pencilliformis from Artic Spitsbergen to UV radation. Protoplasma. 243, 105-116. Safari, P., Rezaei, M., Shaviklo, A. and Babakhani, A. 2015. Optimization of microwave and ultrasound-assisted extraction of antioxidant extract from Green marine algae (Chaetomorpha sp) using response surface methodology (RSM). Iranian Journal of Natural Resources. 68 (4): 555-575 [In Persian]. Senobari, Z., Jafari, N. and Ebrahimzadeh, M. A. 2014. Effect of nickel and pH on antioxidant activity and total phenolic and flavonoid contents of Cladophora glomerata. Journal of Enviromental Science and Technology. 16 (2): 129-138 [In Persian]. Souza, B. W. S., Cerqueira, M. A., Martins, J. T., Quintas, M. A. C., Ferreira, A., Teixeira A. 2011. Antioxidant potential of two red seaweeds from the Brazilian coasts. Journal of Agricultural and Food Chemistry. 59, 5589-5594. Taga, S., Miller, E. E. and Pratt, D. E. 1984. Chia seeds as a source of natural lipid antioxidants. Journal of the American Oil Chemists' Society. 61 (5): 928–931. Tannoury, M., Saab, A., Elia, J., Harb, N., Makhlouf, H. and Diab-Assaf, M. 2017. In vitro cytotoxic activity of Laurencia papillosa marine red algae from the Lebanese coast. Journal of Applied Pharmaceutical Science, 7 (3), 175–179. Wellburn, A.R. and Lichtenthaler, H.K. (1985). Determination of total carotenoids and chlorophylls a and b of leaf in different solvents. Biochemical Society Transactions, 11 (5), 591–592. | ||
|
آمار تعداد مشاهده مقاله: 340 تعداد دریافت فایل اصل مقاله: 340 |
||